Guía para la prevención de nosocomial …

Guía para la prevención de nosocomial ...

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Parte 1. Una visión general de la prevención de la neumonía nosocomial, 1994

Esta guía puede ser un recurso importante para la educación de los profesionales sanitarios (PS) en relación con la prevención y control de las infecciones de las vías respiratorias nosocomiales. Debido a que la educación de los trabajadores sanitarios es la piedra angular de un programa de control eficaz de la infección, los hospitales deben dar alta prioridad a los programas educativos de control de infecciones para este personal.

La neumonía es la segunda infección nosocomial más común en los Estados Unidos y se asocia con una morbilidad y mortalidad. La mayoría de los pacientes con neumonía nosocomial son los bebés, los niños pequeños y las personas mayores de 65 años de edad; personas que tienen una enfermedad grave subyacente, inmunosupresión, sensorio deprimido, y / o enfermedad cardiopulmonar; y las personas que han tenido cirugía toracoabdominal. Aunque los pacientes que reciben ventilación mecánica asistida no representan una proporción importante de pacientes con neumonía nosocomial, que se encuentran en mayor riesgo de adquirir la infección.

La distribución informado de agentes etiológicos que causan neumonía nosocomial se diferencia entre los hospitales debido a las diferentes poblaciones de pacientes y métodos de diagnóstico que se empleen (2-10). En general, sin embargo, las bacterias han sido los patógenos aislados con mayor frecuencia (2-6,9,11-13). Durante 1986-1989, las bacterias aeróbicas componen al menos el 73%, y los hongos 4%, de los aislados a partir de aspirados traqueales y de esputo obtenidas de pacientes con neumonía en la Universidad de Michigan y hospitales en los hospitales participantes en el National Nosocomial Infection Surveillance (NNIS) Sistema; sólo se informaron unas pocas bacterias anaerobias y sin virus, probablemente debido a cultivos anaeróbicos y virales no se llevaron a cabo de forma rutinaria en los hospitales de informes (table_1) (3). Del mismo modo, los cultivos de muestras de broncoscopia obtuvieron a partir de pacientes con ventilación mecánica que tenían neumonía rara vez se han dado anaerobios (5-7,9,11,14,15). Sólo un estudio, que se basa principalmente en los cultivos de aspirado transtraqueal obtenidas de pacientes no reciben ventilación mecánica asistida, informó un predominio de anaerobios (4).

Debido a estos problemas, un grupo de investigadores recientemente formulado recomendaciones de consenso para la normalización de los métodos utilizados para el diagnóstico de neumonía en estudios de investigación clínica de la neumonía asociada al ventilador (44-46). Estos métodos incluyen técnicas tales como broncoscopia cultivo cuantitativo de PSB (5,7-9,13,15,27,31,38,41,47,48), lavado broncoalveolar (BAL) (7,12,41,47,49 BAL -54), y protegido (PBAL) (14). Las sensibilidades reportados de tales métodos han variado, dependiendo de las pruebas o criterios de diagnóstico con los que se compararon, de 70% a 100%, y las especificidades reportados de estos métodos han ido desde 60% a 100%. Estos métodos son invasivos y pueden causar complicaciones tales como hipoxemia, hemorragia, o arritmia (8,13,42,44,52,55,56). Además, la sensibilidad del procedimiento de PSB se puede disminuir en pacientes que reciben terapia con antibióticos (9,13,27). Nonbronchoscopic (NB) procedimientos (por ejemplo, NB-PBAL lt; 12,27,57, 58gt; o NB-PSB lt; 13gt ;, que utilizan cateterismo ciego de las vías respiratorias distales) y cultivo cuantitativo de aspirado endotraqueal (59,60) se han desarrollado recientemente. De estos procedimientos, cultivo de aspirado endotraqueal podría ser el más práctico. El uso de estas pruebas de diagnóstico de broncoscopia y nonbronchoscopic podría ayudar a definir mejor la epidemiología de la neumonía nosocomial, especialmente en pacientes que reciben ventilación mecánica asistida; Sin embargo, se necesitan estudios adicionales para determinar la aplicabilidad de cada prueba en la práctica clínica diaria.

Los resultados del NNIS indican que las neumonías (diagnosticada sobre la base de la definición de vigilancia de los CDC de la neumonía nosocomial) representan aproximadamente el 15% de todas las infecciones relacionadas con los hospitales y son el segundo tipo más común de infección nosocomial después de las de las vías urinarias (2 , 61). En 1984, la incidencia global de infección del tracto respiratorio inferior fue de seis casos por cada 1.000 pacientes dados de alta (2). La incidencia por cada 1.000 pacientes dados de alta varió de 4,2 casos en los hospitales no docentes a 7,7 en los hospitales afiliados a la universidad, lo que probablemente refleja las diferencias institucionales en el nivel de riesgo de los pacientes para la adquisición de la neumonía nosocomial.

neumonía nosocomial se ha asociado con altas tasas de mortalidad. tasas brutas de mortalidad de 20% -50% y las tasas de mortalidad atribuible de 30% -33% se han reportado; En un estudio, el número de muertes atribuidas a neumonía refleja el 60% de todas las muertes a causa de infecciones nosocomiales (17,35,74-80). Los pacientes que reciben ventilación mecánica asistida tienen mayores tasas de mortalidad que los pacientes que no reciben soporte de ventilación; sin embargo, otros factores (por ejemplo la enfermedad subyacente del paciente y la insuficiencia de órganos) son más fuertes predictores de mortalidad en pacientes con neumonía (34,74).

En estudios con radioisótopos trazadores, se encontró que 45% de los adultos sanos para aspirar durante el sueño (84). Las personas que ingieren normalmente (por ejemplo aquellos que tienen depresión de la conciencia, la instrumentación de las vías respiratorias y / o ventilación mecánica asistida, o instrumentación del tracto gastrointestinal o enfermedades) o que simplemente han sido sometidos a cirugía son particularmente susceptibles de aspirado (6,34,35,63,85 -87).

El estómago también podría ser un importante reservorio de microorganismos que causan neumonía nosocomial (34,110-114). El papel del estómago como un reservorio tal puede diferir dependiendo de las condiciones subyacentes del paciente y en intervenciones profilácticas o terapéuticas (22,111,115-118). En personas sanas, pocas bacterias que entran en el estómago sobreviven en presencia de ácido clorhídrico a pH de menos de 2 (119120). Sin embargo, cuando el pH gástrico aumenta desde los niveles normales a mayor que o igual a 4, los microorganismos son capaces de multiplicarse en altas concentraciones en el estómago (117,119,121-123). Esto puede ocurrir en pacientes de edad avanzada (121); en pacientes con aclorhidria (119), íleo, o enfermedad gastrointestinal superior; y en pacientes que reciben alimentación enteral, antiácidos o antagonistas de la histamina 2 (111 117 118, 123-125). Otros factores (por ejemplo reflujo duodeno-gástrico y la presencia de bilis) puede contribuir a la colonización gástrica en pacientes que han deteriorado la motilidad intestinal; estos otros factores necesitan más investigaciones (116).

La neumonía bacteriana se ha traducido, en raras ocasiones, a partir de la diseminación hematógena de la infección en el pulmón desde otro sitio de infección (neumonía por ejemplo, como resultado de la flebitis purulenta o endocarditis derecha). Otro mecanismo, la translocación de bacterias viables de la luz del tracto gastrointestinal a través de la mucosa epitelial a los ganglios linfáticos mesentéricos y en el pulmón, se ha demostrado en modelos animales (133). La translocación se postula que ocurra en pacientes con inmunosupresión, cáncer o quemaduras (133); Sin embargo, los datos no son suficientes para describir este mecanismo en humanos (134).

V. Factores de Riesgo y Medidas de Control

Varios grandes estudios han examinado los posibles factores de riesgo de la neumonía nosocomial bacteriana (Table_2) (6,34,35,135, 136). Aunque los factores de riesgo específicos difieren entre las poblaciones de estudio, que se pueden agrupar en las siguientes categorías generales:

Orofaríngea, traqueal y colonización gástrica

Aunque la mayoría de los estudios (155-158,160-167,169,170,175-177), incluyendo dos meta-análisis (171,178), han demostrado una disminución en las tasas de infecciones nosocomiales respiratorias después de SDD, estos estudios han sido difíciles de evaluar debido a que se han diferenciado en el diseño y períodos población de estudio y muchos han tenido un seguimiento corto (Table_3). En la mayoría de estos estudios, el diagnóstico de neumonía se basa en criterios clínicos; broncoscopia con BAL o PSB se utilizó en sólo unos pocos estudios (159,162,173,175-177,179).

La aspiración de la orofaringe y la flora gástrica

Mecánicamente la ventilación asistida y la intubación endotraqueal

Colonización cruzada través de las manos del personal sanitario

En teoría, el lavado de manos adecuada es una forma efectiva de eliminar bacterias transitorias de las manos (218 219); Sin embargo, el cumplimiento con las recomendaciones de lavado de manos del personal han sido generalmente pobres (220-223). Por esta razón, el empleo de guantes se ha defendido para ayudar a prevenir la contaminación cruzada (224.225). El uso rutinario de guantes, además de la utilización de los vestidos, se asoció con una disminución en la incidencia de infección nosocomial RSV (226) y otras infecciones adquiridas en la UCI (227). Guantes Sin embargo, los patógenos nosocomiales pueden colonizar (228), y los brotes se han rastreado a los trabajadores sanitarios que no cambiaron los guantes después de tener contacto con un paciente y antes de atender a otro (229.230). Además, las manos enguantadas pueden estar contaminados por fugas en los guantes (231).

La contaminación de los dispositivos utilizados en el tracto respiratorio

Los ventiladores mecánicos, circuitos de respiración, humidificadores, intercambiadores de calor y humedad, y en línea nebulizadores

circuitos respiratorios, humidificadores, e intercambiadores de calor-humedad. En los Estados Unidos, la mayoría de los hospitales utilizan ventiladores con cualquiera de burbuja, a través de o de mecha humidificadores que producen o insignificantes (132 283) o no hay aerosoles, respectivamente, para la humidificación. Por lo tanto, estos dispositivos probablemente no plantean un riesgo importante para la neumonía en los pacientes. Además, los humidificadores de burbuja a través de se calientan normalmente a temperaturas que reducen o eliminan los patógenos bacterianos (283,284). agua estéril, sin embargo, todavía se utiliza generalmente para llenar estos humidificadores (285), porque del grifo o agua destilada pueden contener microorganismos, tales como Legionella sp. que son más resistentes al calor que otras bacterias (252,271).

El riesgo potencial de la neumonía en pacientes que utilizan ventiladores mecánicos que se han calentado humidificadores de burbuja a través de se debe principalmente a que el condensado que se forma en el tubo de fase inspiratory- del circuito del ventilador, como resultado de la diferencia en las temperaturas del gas de la fase inspiratoria y aire ambiente; formación de condensación aumenta si no se calienta el tubo (286). El tubo y el condensado pueden se contaminan rápidamente, por lo general con las bacterias que se originan en la orofaringe del paciente (286). En un estudio, 33% de los circuitos inspiratorio fueron colonizados con bacterias a través de esta ruta dentro de 2 horas, y 80% dentro de las 24 horas, después de la iniciación de la ventilación mecánica (286). El derrame del condensado contaminado en árbol traqueobronquial del paciente, como puede ocurrir durante los procedimientos en los que el tubo se mueve (por ejemplo, para la aspiración, el ajuste de la configuración de ventilador, o la alimentación o el cuidado de paciente), puede aumentar el riesgo de neumonía en el paciente (286). Por lo tanto, en muchos hospitales, los trabajadores sanitarios están capacitados para prevenir dicha liberación y para drenar el líquido periódicamente. Microorganismos contaminantes condensado ventilador de circuito pueden ser transmitidos a otros pacientes a través de las manos del personal sanitario manejo del líquido, especialmente si el trabajador sanitario descuida lavarse las manos después de manipular el condensado.

Catéteres de succión, Reanimación Bolsas, Analizadores de oxígeno, y el ventilador espirómetros. catéteres de aspiración traqueal pueden introducir microorganismos en el tracto respiratorio inferior de un paciente. Dos tipos de sistemas de aspiración en catéter se utilizan en los hospitales de Estados Unidos: el sistema de catéter de un solo uso abierto y el sistema de catéter multi-uso cerrada. Los estudios que comparan los dos sistemas han implicado un bajo número de pacientes; los resultados de estos estudios sugieren que el riesgo de contaminación del catéter o neumonía no difiere entre los pacientes en los que se utiliza el método de succión de un solo uso y aquellos sobre los que se utilice el sistema de usos múltiples catéter cerrado (305-307). A pesar de las ventajas de costo y la disminución de la contaminación del medio ambiente se han atribuido al uso del sistema cerrado de aspiración (308.309), se necesitan estudios más grandes para comparar las ventajas y desventajas de ambos sistemas (310).

bolsas de reanimación reutilizables son particularmente difíciles de limpiar y secar después de cada uso; microorganismos en las secreciones o líquido que quedan en la bolsa pueden ser en aerosol y / o pulverizarse en el tracto respiratorio inferior del paciente en los que se utiliza la bolsa; Además, los microorganismos contaminantes pueden ser transmitidas de un paciente a otro a través de manos del personal sanitario (311-313). analizadores de oxígeno y espirómetros ventilador se han asociado con brotes de la colonización del tracto respiratorio por gramnegativos y la neumonía que resultan de la transmisión de paciente a paciente a través de organismos manos del personal sanitario (233,245). Estos dispositivos requieren o bien la esterilización o desinfección de alto nivel entre los usos de los distintos pacientes. La educación de los médicos, terapeutas respiratorios, y el personal de enfermería en relación con los riesgos asociados y la atención adecuada de estos dispositivos es esencial.

máquina de anestesia. Los componentes internos de máquinas de anestesia, que incluyen las fuentes y salidas de gas, válvulas de gas, reguladores de presión, medidores de flujo, y vaporizadores, no se consideran una fuente importante de contaminación bacteriana de los gases inhalados (316). De este modo, la rutina de la esterilización o desinfección de alto nivel de la maquinaria interna es innecesaria.

sistema o circuito de respiración del paciente. El sistema de respiración o circuito del paciente (incluyendo el tubo traqueal o mascarilla, tubo inspiratorio y espiratorio, pieza en Y, de absorción de CO2 y su cámara de fuelle anestesia ventilador y la tubería, humidificador, la válvula limitadora de presión ajustable, y otros dispositivos y accesorios) , a través del cual inhalados y / o gases exhalados fluyen hacia y desde un paciente, pueden contaminarse con microorganismos que podrían proceder de la orofaringe o la tráquea del paciente. Recomendaciones para el cuidado en el uso, el mantenimiento, y el reprocesamiento (limpieza es decir, y la desinfección o esterilización) de los componentes del sistema de respiración se han publicado (317318). En general, los componentes reutilizables generales del sistema respiratorio que toca directamente las membranas mucosas del paciente (por ejemplo, máscara facial o tubo traqueal) o convertirse fácilmente contaminados con las secreciones respiratorias del paciente (por ejemplo, pieza en Y, el tubo inspiratorio y espiratorio, y sensores conectados) se limpian y sometidos a una desinfección de alto nivel o esterilización entre los pacientes. Las otras partes del sistema respiratorio (por ejemplo absorbedor de CO2 y su cámara), para el que un programa apropiado y rentable de reprocesamiento no se ha determinado con firmeza (319), se cambian, se limpian y se esterilizan o sometidos a desinfección de alto nivel periódicamente de acuerdo con las directrices publicadas (317,318) y / o las instrucciones del fabricante.

El uso de filtros bacterianos de alta eficiencia en varias posiciones en el circuito del paciente (por ejemplo, en la pieza en Y o en las inspiratorio y espiratorio lados del circuito del paciente) se ha recomendado (317320321) y demostrado que disminuye la contaminación del circuito (321-323 ). Sin embargo, el uso de filtros bacterianos para prevenir las infecciones pulmonares nosocomiales no se ha demostrado ser eficaz y requiere un análisis adicional (324 a 326).

Aparato de pruebas de función pulmonar.

Los tubos, válvulas de respiración del aire exhalado, y boquillas. Tubos, conectores, válvulas de respiración del aire exhalado, y boquillas podrían contaminarse con secreciones del paciente durante el uso del aparato de pruebas de función pulmonar. Por lo tanto, estos artículos deben ser limpiados y sometidos a una desinfección de alto nivel o esterilización entre usos en diferentes pacientes.

Procedimientos Quirúrgicos toracoabdominales

Ciertos pacientes tienen un alto riesgo de desarrollar complicaciones pulmonares postoperatorias, incluyendo la neumonía. Estas personas incluyen aquellos que son obesos o son mayores de 70 años de edad o que tienen enfermedad pulmonar obstructiva crónica (331-334). Los resultados anormales de las pruebas de función pulmonar (en especial disminución del caudal máximo de vencimiento), antecedentes de tabaquismo, la presencia de traqueotomía o intubación prolongada, o el agotamiento de proteínas que pueden causar debilidad muscular respiratoria, son también factores de riesgo (62,68,136). Los pacientes que se someten a cirugía de la cabeza, el cuello, el tórax o el abdomen podrían tener deterioro de la deglución normal y los mecanismos de limpieza respiratorias como consecuencia de la instrumentación del tracto respiratorio, la anestesia, o un mayor uso de narcóticos y sedantes (332,335, 336). Los pacientes que se someten a cirugía abdominal superior suelen tener disfunción diafragmática que se traduce en una disminución de la capacidad funcional residual de los pulmones, el cierre de las vías respiratorias, y atelectasia (337.338).

Otras medidas profilácticas

La vacunación de los pacientes. Aunque los neumococos no son una causa importante de neumonía nosocomial, estos organismos se han identificado como agentes etiológicos de la infección grave nosocomial pulmonar y bacteremia (359-361). Los siguientes factores ponen los pacientes con alto riesgo de complicaciones de las infecciones neumocócicas: la edad mayor o igual a 65 años de edad, enfermedad cardiovascular o pulmonar crónica, diabetes mellitus, alcoholismo, cirrosis, fístulas de líquido cefalorraquídeo, la inmunosupresión, asplenia funcional o anatómica, o la infección con el virus de la inmunodeficiencia humana (VIH). La vacuna antineumocócica es eficaz en la prevención de la enfermedad neumocócica (362.363). Debido a que dos tercios o más de los pacientes con enfermedades neumocócicas graves han sido hospitalizados al menos una vez dentro de los 5 años anteriores a su enfermedad neumocócica, ofreciendo la vacuna neumocócica en los hospitales (por ejemplo, en el momento del alta del paciente) contribuyan sustancialmente a la prevención de la enfermedad (362364) .

Uso de "Las camas cinéticas" o continua rotación lateral Terapia (CLRT) para pacientes inmovilizados. El uso de camas cinéticos, o CLRT, es una maniobra para la prevención de las complicaciones pulmonares y otros derivados de la inmovilización prolongada o reposo en cama, tales como en pacientes con accidente cerebrovascular agudo, enfermedad crítica, lesión en la cabeza o de tracción, trauma torácico cerrado, y / o mecánicamente ventilación asistida (372-377). Este procedimiento implica el uso de una cama que se convierte de forma continua y poco a poco (de menos de o igual a 40 para CLRT a mayor que o igual a 40 para la terapia cinética) a lo largo de su eje longitudinal. Entre los beneficios hipótesis se mejoran el drenaje de las secreciones dentro de los pulmones y las vías respiratorias inferiores, aumento del volumen tidal, y la reducción de la trombosis venosa con embolización pulmonar resultante (378 a 381). Sin embargo, la eficacia de CLRT para prevenir la neumonía requiere una evaluación adicional porque los estudios han dado resultados variables (372-376). Además, los estudios, ya sea pequeñas cantidades involucradas de los pacientes (373), carecía de la asignación al azar adecuada (372), no tenía una definición clara de la neumonía (372), no distinguía entre adquirida en la comunidad y neumonía nosocomial (373.377), o no se ajustaron para posibles factores de confusión (por ejemplo, la ventilación mecánica, la intubación endotraqueal, intubación nasogástrica y alimentación enteral) (372).

Legionella sp. se encuentran comúnmente en diversos ambientes acuáticos naturales y artificiales (387,388) y que entren en los sistemas de agua de hospitales números bajos o indetectables (389,390). Las torres de refrigeración, condensadores evaporativos, sistemas de agua potable-distribución-calentadas dentro de los hospitales, y agua destilada producida localmente pueden proporcionar un entorno adecuado para la legionela se multiplique. Los factores conocidos que aumentan la colonización y la amplificación de legionela en medios acuáticos artificiales incluyen temperaturas de 25-42 C (391-395), el estancamiento (396), la escala y el sedimento (392), y la presencia de ciertas amebas de vida libre acuática que son capaces de soportar el crecimiento intracelular de legionela (397.398).

El riesgo de una persona para la adquisición de la legionelosis después de la exposición al agua contaminada depende de una serie de factores, incluyendo el tipo y la intensidad de la exposición y el estado de salud de la persona (399 a 401). Las personas que están gravemente inmunodeprimidos o que tienen enfermedades crónicas subyacentes, como la neoplasia hematológica o enfermedad renal en fase terminal, se encuentran en un riesgo significativamente mayor de la legionelosis (401-404). Las personas en las últimas etapas del síndrome de inmunodeficiencia adquirida (SIDA) también son probablemente un mayor riesgo de legionelosis, pero los datos son limitados debido a las pruebas frecuentes de los pacientes (401). Las personas que tienen diabetes mellitus, enfermedad pulmonar crónica, o malignidad hematológica; los que fuman cigarrillos; y los ancianos están en riesgo moderadamente mayor (382). enfermedad del legionario nosocomial También se ha reportado entre los pacientes en los hospitales pediátricos (405,406).

Debido a que las pruebas anteriores se complementan entre sí, la realización de cada prueba cuando se sospecha de la enfermedad del legionario aumenta la probabilidad de confirmar el diagnóstico (418). Sin embargo, debido a que ninguna de las pruebas de laboratorio es 100% sensible, el diagnóstico de la legionelosis no se excluye incluso si uno o más de las pruebas son negativos (413.418). De las pruebas disponibles, el más específico es el aislamiento en cultivo de Legionella sp. de cualquier muestra del tracto respiratorio (419.420).

Modos de transmisión

IV. Definición de la enfermedad del legionario nosocomial

El período de incubación de la enfermedad del legionario es generalmente 2-10 días (431); Por lo tanto, para los fines de este documento y las recomendaciones HICPAC adjuntos, legionelosis confirmada en el laboratorio que se produce en un paciente que ha sido hospitalizado continuamente durante más de o igual a 10 días antes de la aparición de la enfermedad se considera un caso definido de enfermedad de los legionarios nosocomial y la infección confirmada por laboratorio que se produce 2-9 días después de su ingreso es un posible caso de la enfermedad.

V. Medidas de Prevención y Control

Prevención de la enfermedad de los legionarios en los hospitales sin casos identificados (prevención primaria)

Las estrategias de prevención en los centros de salud en los que no se han identificado casos de legionelosis nosocomial se han diferenciado en función del estado inmunológico de los pacientes, el diseño y la construcción de la instalación, los recursos disponibles para la implementación de estrategias de prevención, y los reglamentos estatales y locales.

Al menos dos estrategias son practicadas en relación con los medios más adecuados y rentables para la prevención de la legionelosis nosocomial, especialmente en los hospitales en los que no se han detectado casos o casos esporádicos de la única enfermedad. Sin embargo, un estudio comparativo de las relaciones costo-beneficio de estas estrategias no se ha llevado a cabo.

El primer enfoque se basa en el periódico cultivo, de rutina de muestras de agua de sistema de agua potable del hospital con el propósito de detectar Legionella sp. (432,433). Cuando es mayor que o igual a 30% de las muestras obtenidas son con cultivo positivo para Legionella sp. sistema de agua potable del hospital se descontamina (433), y las pruebas de diagnóstico de laboratorio para la legionelosis se pondrá a disposición de los médicos en el departamento de microbiología del hospital por lo que la vigilancia activa de casos puede ser implementada (433.434). Este enfoque se basa en la premisa de que no hay casos de legionelosis nosocomial pueden ocurrir si Legionella sp. no está presente en el sistema de agua potable, y, a la inversa, si Legionella sp. Se cultivan desde el agua, pueden ocurrir casos de legionelosis nosocomial (428.435). Los defensores de esta estrategia indican que cuando los médicos se les informa de que el sistema de agua potable del hospital es con cultivo positivo para Legionella sp. que están más inclinados a realizar las pruebas necesarias para la legionelosis (434). Una ventaja potencial de utilizar este enfoque en los hospitales en los que no han ocurrido casos de legionelosis nosocomial es que el cultivo de manera rutinaria un número limitado de muestras de agua es menos costosa que la realización rutinaria de pruebas de diagnóstico de laboratorio para todos los pacientes que tienen neumonía nosocomial.

El segundo enfoque de la prevención y control de la legionelosis nosocomial implica a) el mantenimiento de un alto índice de sospecha de la legionelosis y apropiadamente usando pruebas de diagnóstico de la legionelosis en los pacientes con neumonía nosocomial y que están en alto riesgo de desarrollar la enfermedad y morir de la infección (385.445 ), b) iniciar una investigación para una fuente del hospital de Legionella sp. en la identificación de un caso de definitiva o dos casos de posible enfermedad de los legionarios nosocomiales, y c) el mantenimiento de rutina torres de refrigeración y el uso de sólo agua estéril para el llenado y el enjuague de terminales de los dispositivos de nebulización.

Las medidas utilizadas en los hospitales en los que se han identificado casos de legionelosis nosocomial incluyen o bien a) el mantenimiento de rutina de agua potable en mayor que o igual a 50 ° C o inferior a 20 C en el grifo o b) cloración de agua caliente para lograr 1-2 mg / l de cloro libre residual en el grifo, especialmente en las zonas donde se encuentran los pacientes de alto riesgo y otros inmunodeprimidos (385,428,439,446-449). Sin embargo, la relación coste-beneficio de este tipo de medidas en los hospitales en los que no se han identificado casos de legionelosis necesita una evaluación adicional.

Prevención de la enfermedad de los legionarios en los hospitales con casos identificados (prevención secundaria)

Las indicaciones para una investigación del medio ambiente a escala completa para buscar y, posteriormente, descontaminar las fuentes identificadas de Legionella sp. en el hospital entornos no se han aclarado, y estas indicaciones probablemente diferente dependiendo del hospital. En los hospitales en los que se identifican tan sólo una a tres casos nosocomiales durante un período de varios meses, se intensificó la vigilancia de la enfermedad de los legionarios frecuentemente ha identificado numerosos casos adicionales (403,422,425,447). Este hallazgo sugiere la necesidad de un bajo umbral para iniciar una investigación después de la confirmación de laboratorio de los casos de legionelosis nosocomial. Sin embargo, cuando se desarrolla una estrategia para responder a esta identificación, el personal de control de infecciones deben tener en cuenta el nivel de riesgo para la adquisición nosocomial de, y la mortalidad por, Legionella sp. la infección en su hospital particular.

Otras medidas preventivas se han utilizado para proteger a los pacientes severamente inmunocomprometidos. En un hospital, los pacientes inmunodeprimidos fueron restringidos de tomar una ducha, y, para estos pacientes, sólo se utilizó agua estéril para beber o sondas nasogástricas de lavado (429). En otro hospital, se utilizó un enfoque combinado que consta de calentamiento continuo, filtración de partículas, tratamiento ultravioleta y hipercloraciones pulso mensual del suministro de agua a la unidad de trasplante de médula ósea para disminuir la incidencia de la enfermedad del legionario (458).

Aspergillus sp. son hongos ubicuos que ocurren comúnmente en el suelo, agua y vegetación en descomposición. Aspergillus sp. se han cultivado a partir de aire no filtrado, sistemas de ventilación, polvo contaminado desalojado durante la renovación del hospital y de la construcción, las superficies horizontales, alimentos y plantas ornamentales (466).

Aspergillus fumigatus y Aspergillus flavus son los más frecuentemente aislado de Aspergillus sp. en pacientes con aspergilosis confirmada por laboratorio (467). aspergilosis nosocomial se ha reconocido cada vez más como una causa de enfermedad grave y mortalidad en pacientes inmunocomprometidos altamente (por ejemplo, pacientes sometidos a quimioterapia y / o trasplante de órganos, incluyendo el trasplante de médula ósea para hematológica y otras neoplasias malignas que) (468-472).

El informaron la mortalidad atribuible de la aspergilosis pulmonar invasiva se ha diferenciado en función de la población de pacientes estudiados. Las tasas han sido tan alta como 95% en los receptores de trasplantes y pacientes con anemia aplásica médula ósea alogénico, en comparación con tasas del 13% y el 80% en pacientes leucémicos (489-491).

IV. Factores de riesgo y medidas de control

El principal factor de riesgo para la aspergilosis invasiva es grave y granulocitopenia prolongada, tanto a las enfermedades ya la terapia inducida-(510). Debido a que los receptores de médula ósea-trasplante experimentan la más grave grado de granulocitopenia, que probablemente constituyen la población con mayor riesgo de desarrollar aspergilosis invasiva (490.511). La tendencia de los receptores de médula ósea del trasplante se contraiga granulocitopenia grave (es decir, menos de 1.000 polimorfonucleares / ul) se asocia con el tipo de injerto que reciben. Aunque tanto los receptores de médula ósea-trasplante autólogo y alogénico están severamente granulocitopénica para un máximo de 4 semanas después del procedimiento de trasplante, enfermedad aguda o crónica de injerto contra huésped también podría desarrollar en los receptores de trasplante alogénico-. Este último podría ocurrir hasta varios meses después del procedimiento, y la enfermedad y / o su tratamiento (que a menudo incluye altas dosis de corticosteroides, ciclosporina y otros agentes inmunosupresores) podría dar lugar a la granulocitopenia grave. En consecuencia, en el desarrollo de estrategias para prevenir la invasión de Aspergillus sp. en los receptores de médula ósea-trasplante, el personal de control de infecciones debe considerar la exposición del paciente al hongo durante y posterior al período post-trasplante inmediato. Tras el alta hospitalaria, los pacientes (especialmente los receptores de trasplante alogénico-) podrían continúan manifestando granulocitopenia grave y, por lo tanto, son susceptibles a la exposición de hongos en el hogar y en los centros de atención ambulatoria. Para ayudar a resolver el problema de la aspergilosis invasiva en receptores de médula ósea-trasplante, varios estudios están en curso para evaluar nuevos métodos de a) mejorar la resistencia del huésped a fúngica invasiva (y otras infecciones) y b) la eliminación o supresión de la colonización fúngica respiratorio del tracto respiratorio superior. Estos métodos incluyen, respectivamente, el uso de factores de granulocitos y estimulantes de colonias y la aplicación intranasal de la anfotericina B o la profilaxis de medicamentos antifúngicos orales o sistémicos (466,512-515). Para receptores de trasplantes de órganos sólidos, los factores de riesgo para la aspergilosis invasiva no se han estudiado tan extensivamente. En un estudio de los receptores de trasplante hepático, factores de riesgo para la infección invasiva con Aspergillus sp. incluida preoperatoria y postoperatoria recibo de esteroides y agentes antimicrobianos y la duración prolongada de la cirugía de trasplante (516).

Un solo caso de nosocomial Aspergillus sp. la neumonía es a menudo difícil de vincular a una exposición ambiental específica. Sin embargo, los casos adicionales pueden no ser detectados sin una búsqueda activa que incluye una revisión retrospectiva intensivo de microbiológico, histopatológicos y registros post mortem; notificación de los médicos que atienden a pacientes de alto riesgo; y el establecimiento de un sistema de vigilancia prospectiva de casos adicionales. Cuando se detecten otros casos, la probabilidad de que se incrementa una fuente del medio ambiente hospitalario de Aspergillus sp. pueden ser identificados (476,478,519-524). Investigaciones anteriores han demostrado la importancia de las actividades de construcción y / o la contaminación fúngica de los sistemas de tratamiento de aire de hospital como fuentes principales de los brotes (473,476,478,519-523). Nuevas técnicas de tipificación molecular (es decir, el cariotipo lt; 525gt; y elaboración de perfiles de ADN endonucleasa, que ya está disponible para A. fumigatus lt; 526gt;) puede ayudar considerablemente en la identificación de la fuente de un brote.

Los brotes de aspergilosis invasiva refuerzan la importancia de mantener un entorno lo más libre posible de Aspergillus sp. esporas para los pacientes que tienen granulocitopenia grave. Para lograr este objetivo, los servicios especializados en muchos hospitales grandes – en particular los servicios de trasplante de médula ósea – se han instalado "ambientes protegidos" para el cuidado de su alto riesgo, pacientes gravemente granulocitopénica y han aumentado su vigilancia durante la construcción del hospital y el mantenimiento de rutina del hospital de sistemas de filtración de aire y ventilación para evitar exponer a los pacientes de alto riesgo de explosiones de esporas de hongos (476,478,519-523,527-532) .

El cobre-8-quinolinolato se utilizó en las superficies ambientales contaminadas con Aspergillus sp. para controlar un brote notificado de la aspergilosis (537), y se ha incorporado en el material a prueba de fuego de un hospital de nueva construcción para ayudar a disminuir la carga de esporas del medio ambiente (530); sin embargo, su aplicabilidad general no se ha establecido.

Los virus pueden ser una causa importante y, a menudo poco apreciado de la neumonía nosocomial (538-540). En un estudio prospectivo de las infecciones nosocomiales endémicas, aproximadamente el 20% de los casos de neumonía el resultado de infecciones virales (539). Aunque el diagnóstico precoz y el tratamiento de las infecciones de neumonía viral han sido posible en los últimos años (541-544), muchos pacientes hospitalizados permanecen en alto riesgo de desarrollar neumonía viral grave ya veces fatal (538,545-552). Estos datos y los informes de brotes bien documentados que implican la transmisión viral nosocomial (553-556) indican que las medidas para prevenir la transmisión viral deben ser instituidos.

infección por VRS es más común durante la infancia y la niñez temprana, pero también puede ocurrir en adultos (562,565,574,575). La infección generalmente causa una enfermedad del tracto respiratorio superior leve o moderadamente grave. Sin embargo, tanto la neumonía en peligro la vida y la bronquiolitis han ocurrido en pacientes inmunodeprimidos, ancianos y niños que tienen enfermedad cardiaca y pulmonar crónica (547,549,564,565, 576,577).

la reciente vigilancia de 10 laboratorios de los hospitales de Estados Unidos en el que se realizaron cultivos de RSV sugiere que se producen brotes de la comunidad sobre una base estacional de diciembre a marzo; estos brotes duran 3-5 meses y se asocian con un mayor número de hospitalizaciones y muertes de lactantes y niños pequeños (578). Durante los brotes de la comunidad de RSV, los niños que tienen síntomas respiratorios en el momento del ingreso en el hospital a menudo son reservorios de RSV (553.555).

Las características clínicas de la infección por VRS, especialmente en los recién nacidos, son a menudo indistinguibles de los de otras infecciones virales del tracto respiratorio (565,566). Cultura del VRS de las secreciones respiratorias es el estándar para el diagnóstico. kits de detección rápida de antígeno que utilizan la inmunofluorescencia directa o ensayos de inmunoabsorción ligado a enzimas puede proporcionar resultados en cuestión de horas. La ventaja de usar estas pruebas para identificar a los pacientes infectados depende de la sensibilidad y especificidad de la prueba. La sensibilidad y la especificidad de los inmunoensayos enzimáticos RSV varían entre 80% y 95% y puede ser incluso menor en la práctica real (579 a 582). En general, una vez que se identifican los casos confirmados por laboratorio de infección por VRS en un hospital, un diagnóstico presuntivo de la infección por VRS en los casos subsiguientes con manifestaciones sugestivos de infección por VRS puede ser aceptable para los propósitos de control de infecciones.

Modos de transmisión

En los brotes nosocomiales por VRS para el que se escriben los aislamientos virales, se identificó a menudo más de una cepa de RSV (554 563 586), lo que sugiere múltiples fuentes de virus. Las fuentes potenciales incluyen a los pacientes, el personal sanitario y los visitantes. Dado que los bebés infectados excretan grandes cantidades de virus en sus secreciones respiratorias y pueden contaminar fácilmente su entorno inmediato, que son un importante reservorio para el RSV (587). Los trabajadores sanitarios podrían llegar a infectarse después de la exposición en la comunidad (588) o en el hospital y posteriormente transmitir la infección a otros pacientes, el personal sanitario, o los visitantes (566,589).

IV. Medidas de control

El uso de guantes y batas se ha asociado con menor incidencia de RSV nosocomial (226). El uso de guantes ha ayudado a la transmisión disminución del VRS, probablemente porque los guantes recuerdan a los trabajadores sanitarios para cumplir con el lavado de manos y otras precauciones e impedir que se toquen sus ojos o la nariz. Sin embargo, los beneficios derivados del uso de guantes se compensan si los guantes no se cambian después del contacto con un paciente infectado o con fómites contaminados y si las manos no se lavan adecuadamente después de quitarse los guantes (229). El uso de ambos guantes y batas durante el contacto con los niños infectados por VRS o su entorno inmediato ha tenido éxito en la prevención de la infección (226). Además, el uso de gafas-nariz en lugar de máscaras ha protegido los trabajadores sanitarios de la infección; Sin embargo, gafas-nariz no están ampliamente disponibles y son incómodos de llevar (593.597).

Los depósitos más importantes de virus de la gripe son personas infectadas. Aunque el período de mayor comunicabilidad es durante los 3 primeros días de la enfermedad, el virus puede ser derramada tanto antes de la aparición de los síntomas y de mayor que o igual a 7 días luego (556,604, 618).

Prevención y Control de la Influenza

La medida más eficaz para reducir el impacto de la gripe es la vacunación de las personas con alto riesgo de complicaciones de la infección antes de la temporada de gripe comienza cada año. personas de alto riesgo incluyen personas de 6 meses a 18 años de edad que están recibiendo terapia de aspirina a largo plazo y de las personas que, o bien a) son mayores que o igual a 65 años de edad; b) se encuentran en las unidades de atención a largo plazo; o c) tener o enfermedades crónicas del sistema pulmonar o cardiovascular, la diabetes mellitus, disfunción renal, hemoglobinopatías o inmunosupresión (611,626-628). Los pacientes que tienen trastornos músculo-esqueléticos que impiden la respiración adecuada también pueden estar en alto riesgo de complicaciones derivadas de la gripe. Cuando altas tasas de vacunación se consiguen en entornos cerrados o semi-cerrados, el riesgo de brotes se reduce debido a la inducción de la inmunidad de grupo (629.630).

La aparición de cepas amantadina y rimantadina resistente del virus de influenza A se ha observado en personas que han recibido estos fármacos para el tratamiento de la infección (642.643). Debido al riesgo potencial de transmisión de cepas virales resistentes a los contactos de las personas que recibieron amantadina o rimantadina para el tratamiento (643,644), las personas infectadas que toman cualquiera de los medicamentos deben evitar, en lo posible, el contacto con otras personas durante el tratamiento y durante 2 días después de la suspensión del tratamiento ( 644.645). Esto es particularmente importante si los contactos son personas de alto riesgo no infectados (644,646).

Parte II. Las recomendaciones para prevenir la neumonía nosocomial

Estas recomendaciones se presentan en el siguiente orden basado en la etiología de la infección: la neumonía bacteriana, incluyendo la enfermedad del legionario; neumonía por hongos (es decir, la aspergilosis); y la neumonía asociada al virus (es decir, el VRS y las infecciones de gripe). Cada tema se subdivide según los siguientes criterios generales para el control de la infección nosocomial:

La educación del personal y la vigilancia de la infección;

Modificar el riesgo de acogida para la infección.

Al igual que en anteriores guías de los CDC, cada recomendación se clasifica sobre la base de la evidencia científica existente, fundamentos teóricos, aplicabilidad e impacto económico (224,225,650-654). Sin embargo, el sistema de CDC anterior de las recomendaciones de la categorización se ha modificado de la siguiente manera:

Categoría IA altamente recomendable para todos los hospitales y fuertemente

Categoría IB altamente recomendable para todos los hospitales y visto como

CATEGORÍA II sugiere llevar a cabo en muchos hospitales. Estas

No hay recomendaciones; Prácticas para las que suficiente evidencia o consenso problema no resuelto sobre la eficacia existe.

Educación y el personal de vigilancia de infecciones

Educar a los trabajadores sanitarios con respecto a las neumonías bacterianas nosocomiales y procedimientos de control de infecciones se usan para prevenir estas neumonías (655-661). Categoría IA

Llevar a cabo la vigilancia de la neumonía bacteriana entre los pacientes de la UCI con alto riesgo de neumonía bacteriana nosocomial (por ejemplo, los pacientes que reciben ventilación mecánica asistida y el postoperatorio de pacientes seleccionados) para determinar las tendencias e identificar problemas potenciales (6,34,35,62,63,662-664). Incluir datos relativos a los microorganismos causales y sus patrones de susceptibilidad antimicrobiana (2,3). expresas de datos como las tasas (por ejemplo, el número de pacientes o infecciones por 100 días en la UCI o por cada 1.000 días de respirador infectados) para facilitar las comparaciones intrahospitalarias y la determinación de las tendencias (66,665-667). Categoría IA

La interrupción de la transmisión de microorganismos

(1) Use agua estéril (no destilada, estéril) para enjuagar

(2) No hay recomendaciones para el uso de agua del grifo (como alternativa

Los ventiladores mecánicos, la respiración circuitos, humidificadores y nebulizadores

No esterilice rutinaria o desinfectar la maquinaria interna de los ventiladores mecánicos (126,128,674). Categoría IA

circuitos del ventilador con humidificadores

(1) normalmente no cambian con más frecuencia que cada 48

hora el circuito respiratorio, incluyendo la tubería y la válvula de exhalación, y el burbujeo unido o humidificador mecha de un ventilador que se utiliza en un paciente individual (34283288). Categoría IA

(2) No Recomendación para la longitud máxima de tiempo después de

el cual el circuito de respiración y el burbujeo o mecha unida humidificador de un ventilador que se utilizan en un paciente debe cambiar (289). cuestión no resuelta

(3) Esterilizar circuitos respiratorios reutilizables y burbujeo o

mecha humidificadores o someter a desinfección de alto nivel entre sus usos en diferentes pacientes (259,260,262,264,267). Categoría IB

(4) Periódicamente drenar y eliminar cualquier condensado que se

se acumula en los tubos de un ventilador mecánico, tomando precauciones para no permitir que el condensado se drene hacia el paciente. Lávese las manos después de realizar el procedimiento o manejo del líquido (215282286). Categoría IB

(5) No Recomendación para la colocación de un filtro o trampa en el

extremo distal del tubo de la fase espiratoria del circuito de respiración para recoger condensado (247282). cuestión no resuelta

(6) No coloque filtros bacterianos entre el humidificador

depósito y el tubo de fase inspiratoria del circuito de respiración de un ventilador mecánico. Categoría IB

(7) los fluidos del humidificador

(A) Utilizar agua estéril para llenar burbujeante humidificadores (132,

241249250286). CATEGORÍA II

(B) Utilizar estéril, destilada, o agua del grifo para llenar la mecha

humidificadores (249, 250,286). CATEGORÍA II

(C) No Recomendación para la utilización preferente de un sistema cerrado,

sistema de humidificación de alimentación continua. cuestión no resuelta

circuitos de respiración del ventilador del condensador con humidificadores higroscópicos o intercambiadores de calor-humedad

(1) No hay recomendaciones para el uso preferencial de higroscópico

condensador-humidificador o un intercambiador de calor y humedad en lugar de un humidificador térmico para prevenir la neumonía nosocomial (298-302). cuestión no resuelta

(2) Cambiar el condensador higroscópico-humidificador o calor

intercambiador de humedad de acuerdo con la recomendación del fabricante y / o cuando la evidencia de contaminación grave o disfunción mecánica del dispositivo está presente (298). Categoría IB

(3) No rutinariamente cambiar el circuito respiratorio conectado a

un intercambiador de condensador-humidificador o por calor y humedad higroscópica, mientras que se está utilizando en un paciente (298,301). Categoría IB

Siga las instrucciones del fabricante para el uso y mantenimiento de los humidificadores de oxígeno de pared a menos que los datos indican que la modificación de las instrucciones no representa una amenaza para el paciente y es rentable (675-679). Categoría IB

Entre usos en diferentes pacientes, cambiar el tubo, incluidas las púas o máscara nasal, que se utilizan para suministrar oxígeno a partir de una toma de corriente. Categoría IB

Volumen pequeño nebulizadores de medicamentos: "en línea" y nebulizadores portátiles

(1) entre tratamientos en el mismo paciente, desinfectar, enjuagar

con agua estéril, o nebulizadores de pequeño volumen de medicación con aire seco (242,258). Categoría IB

(2) No hay recomendaciones para el uso de agua del grifo como una alternativa

de agua estéril para enjuagar los nebulizadores de pequeño volumen de medicación reutilizables entre los tratamientos en el mismo paciente (242258273). cuestión no resuelta

Entre usos en diferentes pacientes, reemplace nebulizadores con los que han sido sometidos a esterilización o desinfección de alto nivel (126,128,129,269,680). Categoría IB

Utilice sólo líquidos estériles para la nebulización, y dispensar estos fluidos asépticamente (238,241,249,250,258,269,304). Categoría IA

Si se utilizan frascos de medicamentos de dosis múltiples, manipular, distribuir y almacenar de acuerdo con las instrucciones del fabricante (238,304,680-682). Categoría IB

nebulizadores y tiendas de campaña niebla de gran volumen

Esterilizar los nebulizadores de gran volumen que se utilizan para la terapia de inhalación (por ejemplo para pacientes con traqueostomía) o someter a desinfección de alto nivel entre los usos de los diferentes pacientes y después de cada 24 horas de uso en el mismo paciente (126128129). Categoría IB

(1) Use los nebulizadores niebla-tienda de campaña y embalses que tienen

la esterilización sufrido o desinfección de alto nivel, y vuelva a colocar estos elementos entre usos en diferentes pacientes (684). Categoría IB

(2) No hay recomendaciones en cuanto a la frecuencia de cambio

nebulizadores niebla-tienda de campaña y embalses, mientras que los productos estén siendo utilizados por un paciente. cuestión no resuelta

Otros dispositivos utilizados en asociación con la terapia respiratoria

Entre usos en diferentes pacientes, esterilizar o sujetos a repirómetros alto nivel de desinfección portátiles, sensores de oxígeno y otros aparatos respiratorios utilizado en múltiples pacientes (233,245). Categoría IB

(1) Entre los usos de los distintos pacientes, esterilizar o sujeto

a las bolsas de alto nivel de desinfección reutilizables accionado a mano de reanimación (por ejemplo Ambu bolsas) (255,311-313). Categoría IA (2) No hay recomendaciones en cuanto a la frecuencia de cambio

filtros hidrófobos colocados en el puerto de conexión de bolsas de reanimación. cuestión no resuelta

máquinas de anestesia y sistemas de respiración o los circuitos del paciente

Sin Recomendación de la frecuencia de la limpieza y desinfección de las válvulas unidireccionales y las cámaras de absorción de dióxido de carbono (317-319) de forma rutinaria. cuestión no resuelta

Periódicamente drenar y eliminar cualquier condensado que se acumula en el tubo de un circuito de respiración, tomando precauciones para no permitir que el condensado drene hacia el paciente. Después de realizar el procedimiento o manejo del líquido, lavar las manos con agua y jabón o con una preparación de lavado de manos sin agua (218,219,686,687). Categoría IB

No esterilice rutinaria o desinfectar la maquinaria interna de máquinas de ensayo de función pulmonar entre los usos en diferentes pacientes (327,328). CATEGORÍA II

Esterilizar o sujetos a desinfección de alto nivel de líquido químico o pasteurización boquillas reutilizables y tubos o conectores entre los usos de los diferentes pacientes, o siga las instrucciones de los fabricantes de dispositivos ‘para su reprocesamiento (260,261,263-267). Categoría IB

La interrupción de la transmisión de persona a persona de bacterias

Independientemente de si se usan guantes, lavarse las manos después del contacto con las membranas mucosas, secreciones respiratorias u objetos contaminados con secreciones respiratorias. Independientemente de si se utilizan guantes, lavarse las manos antes y después del contacto con a) un paciente que tiene un tubo endotraqueal o de traqueotomía en su lugar y b) cualquier dispositivo respiratorio que se utiliza en el paciente (210, 212,218,219,231,689,690). Categoría IA

Use guantes para manipular secreciones u objetos contaminados con secreciones respiratorias de los pacientes (226.227) respiratorias. Categoría IA

Cambiar los guantes y lavarse las manos a) después del contacto con un paciente; b) después de manipular secreciones respiratorias u objetos contaminados con las secreciones de un paciente y antes del contacto con otro paciente, un objeto o superficie del medio ambiente; y c) entre los contactos con un sitio contaminado cuerpo y el tracto respiratorio de, o el dispositivo respiratorio activado, el mismo paciente (226,228-230). Categoría IA

Use una bata si la suciedad con las secreciones respiratorias de un paciente se anticipa, y cambiar el vestido después de tal contacto y antes de atender a otro paciente (226). Categoría IB

El cuidado de los pacientes que tienen una traqueotomía

Realizar traqueotomía en condiciones estériles. Categoría IB

Al cambiar un tubo de traqueotomía, utilizar técnicas asépticas y vuelva a colocar el tubo con uno que se ha sometido a la esterilización o desinfección de alto nivel. Categoría IB

La aspiración de las secreciones de las vías respiratorias

Sin Recomendación para el uso de guantes estériles en lugar de guantes limpios no estériles, pero al realizar la aspiración de las secreciones respiratorias de un paciente. cuestión no resuelta

Si el sistema de aspiración abierta se emplea, utilizar un catéter estéril de un solo uso. CATEGORÍA II

Utilice solamente líquido estéril para eliminar las secreciones del catéter de aspiración si el catéter se va a utilizar para la re-entrada en el tracto respiratorio inferior del paciente (691). Categoría IB

No hay Recomendaciones de uso preferencial del catéter de aspiración multiuso sistema cerrado o en el de un solo uso de catéter de sistema abierto para la prevención de la neumonía (305-308,310). cuestión no resuelta

Cambiar toda la longitud del tubo de recogida de succión entre usos en los distintos pacientes. Categoría IB

Cambiar botes de recogida de aspiración entre los usos de los distintos pacientes, excepto cuando se utiliza en las unidades de atención de plazo corto. Categoría IB

Modificación del riesgo para la infección por Host

Precauciones para prevenir la neumonía endógena

Descontinuar la alimentación enteral-tubo y extraer dispositivos tales como endotraqueal, traqueotomía, y / o enteral (es decir orogástrica, nasogástrica, o yeyunal) tubos de pacientes tan pronto como las indicaciones clínicas para éstos son resueltos (6,34,35,85-87,117,183,185,186 , 202 692). Categoría IB

La prevención de aspiración asociados con la alimentación enteral

Si la maniobra no está contraindicada, elevar en un ángulo de 30-45 la cabecera de la cama de un paciente con alto riesgo de neumonía por aspiración (por ejemplo, un paciente que está recibiendo ventilación mecánica asistida y / o que tiene un tubo enteral en su lugar) (74,185 ). Categoría IB

Rutinariamente verificar la colocación apropiada de la sonda de alimentación (693-695). Categoría IB

Sin Recomendación para el uso preferente de tubos de pequeño calibre para la alimentación enteral (694). cuestión no resuelta

Sin Recomendación para colocar preferentemente los tubos de alimentación (por ejemplo, tubos de yeyuno) distal al píloro (199,200). cuestión no resuelta

La prevención de aspiración asociado a la intubación endotraqueal

No hay recomendaciones para el uso de orotraqueal en lugar de tubo nasotraqueal para prevenir la neumonía nosocomial (696). cuestión no resuelta

Antes de desinflar el manguito de un tubo endotraqueal en la preparación para la retirada del tubo, o antes de mover el tubo, asegúrese de que las secreciones se borran de encima del manguito de tubo. Categoría IB

La prevención de la colonización gástrica

Si es necesaria la profilaxis de sangrado con el estrés de un paciente que recibe ventilación mecánica asistida, utilice un agente que no eleva el pH gástrico del paciente (22,34,112,118, 122,147-154). CATEGORÍA II

Sin Recomendación para la descontaminación selectiva del tracto digestivo de un paciente en estado crítico, con asistencia respiratoria mecánica, o en la UCI con antimicrobianos orales y / o por vía intravenosa para prevenir bacilos gramnegativos (o Candida sp.) Neumonía (155-180). cuestión no resuelta

Sin Recomendación para la acidificación de rutina de la alimentación gástrica para prevenir la neumonía nosocomial (181). cuestión no resuelta

La prevención de la neumonía postoperatoria

Instruir a los pacientes preoperatorios, especialmente aquellos con alto riesgo de contraer neumonía, tos frecuente respecto, al respirar profundamente, y ambulating lo antes indicado como punto de vista médico durante el período postoperatorio (346.348). Los pacientes con alto riesgo son los que van a recibir la anestesia – especialmente los que van a tener un abdominal, torácica, la cabeza, el cuello o la operación – y los que tienen disfunción pulmonar sustancial (por ejemplo, los pacientes que tienen enfermedad pulmonar obstructiva crónica, una anormalidad de músculo-esquelético el pecho, o las pruebas de función pulmonar anormales) (331-334,337,338). Categoría IB

Animar a los pacientes postoperatorios toser con frecuencia, respirar profundamente, moverse alrededor de la cama, y ​​deambular a menos que estas acciones están contraindicadas médicamente (345346348). Categoría IB

Otros procedimientos profilácticos para la neumonía

La vacunación de pacientes

Vacunar a los pacientes con alto riesgo de complicaciones de las infecciones neumocócicas con la vacuna antineumocócica de polisacáridos. Tales pacientes incluyen personas edades mayores o iguales a 65 años; los adultos que tienen cardiovascular crónica o enfermedad pulmonar, diabetes mellitus, alcoholismo, cirrosis o fístulas de líquido cefalorraquídeo; y los niños y adultos que están inmunodeprimidos o que tienen asplenia funcional o anatómica o la infección por VIH (362-364). Categoría IA

El uso de rotación "cinético" camas o terapia de rotación lateral continua

PREVENCIÓN Y CONTROL DE LA ENFERMEDAD DE LOS LEGIONARIOS

Educación y el personal de vigilancia de infecciones

Educar a) los médicos para aumentar su sospecha de casos de legionelosis nosocomial y utilizar métodos adecuados para su diagnóstico y b) otro personal del hospital (es decir, de cuidado del paciente, control de infecciones, e ingeniería de personal) sobre medidas de control de la legionelosis nosocomial (659 -661). Categoría IA

Establecer un mecanismo (s) para proporcionar a los médicos con pruebas de laboratorio apropiadas para el diagnóstico de la enfermedad del legionario (386, 413-415,700). Categoría IA

Mantener un alto índice de sospecha para el diagnóstico de la enfermedad del legionario nosocomial, especialmente en pacientes que están en alto riesgo de contraer la enfermedad. Tales pacientes incluyen aquellos que están inmunodeprimidas (por ejemplo, receptores de trasplantes de órganos, los pacientes con SIDA y pacientes que están siendo tratados con esteroides sistémicos), los que son mayores o iguales a 65 años de edad, y aquellos que tienen una enfermedad crónica subyacente ( por ejemplo, diabetes mellitus, insuficiencia cardíaca congestiva, y enfermedad pulmonar obstructiva crónica) (385,386,399,401-405,411). CATEGORÍA II

No hay recomendaciones para el cultivo de manera rutinaria los sistemas de agua de Legionella sp. (271,385,428,432,434,435,437-439,454,701). cuestión no resuelta

La interrupción de la transmisión de Legionella sp.

La prevención primaria (prevención de la legionelosis nosocomial cuando se han documentado casos)

Nebulización y otros dispositivos

(1) Use agua estéril (no destilada, estéril) para enjuagar

(2) No hay recomendaciones para el uso de agua del grifo como una alternativa

Use sólo agua estéril (no destilada, estéril) para llenar los depósitos de los dispositivos utilizados para la nebulización (241,252,258,271, 702). Categoría IA

Cuando se construye un nuevo edificio del hospital, torre (s) lugar de refrigeración de tal manera que el desplazamiento de la torre se dirige lejos de sistema de aire de admisión del hospital y el diseño de las torres de refrigeración de tal manera que el volumen de la deriva del aerosol se reduce al mínimo (421,703). Categoría IB

Para las torres de refrigeración operativos, instalar separadores de gotas, regularmente utilizar un biocida eficaz, mantener la torre de acuerdo con las recomendaciones del fabricante, y mantener registros adecuados de mantenimiento (Apéndice D) (421,463,704). Categoría IB

No Recomendación para mantener de forma rutinaria de agua potable a la salida en mayor que o igual a 50 C o menos de 20 C, o cloración de agua caliente para lograr 1-2 mg / L de cloro libre residual en el grifo (385,428,439,446-449). cuestión no resuelta

No hay recomendaciones para el tratamiento de agua con ozono, luz ultravioleta, o iones de metales pesados ​​(457,459-462,465). cuestión no resuelta

La prevención secundaria (respuesta a la identificación de la legionelosis nosocomial confirmada por laboratorio)

Cuando se identifica un solo caso de la enfermedad confirmada por laboratorio, definida nosocomial legionarios, o si dos o más casos de, posible enfermedad de los legionarios nosocomiales confirmada por laboratorio se producen durante un período de 6 meses, se recomiendan los siguientes procedimientos:

Póngase en contacto con el departamento de salud local o estatal, o CDC, si la enfermedad es de notificación obligatoria en el estado o si necesita ayuda. Categoría IB

Si un caso es identificado en un paciente severamente inmunocomprometidos (por ejemplo, un receptor de transplante de órganos) o si los pacientes severamente inmunocomprometidos están siendo tratados en el hospital, lleve a cabo una epidemiológico combinado e investigación del medio ambiente (como se describe en II-B-3-b-1 a través de II-B-5) para determinar la fuente (s) de Legionella sp. Categoría IB

Si los pacientes severamente inmunocomprometidos no están siendo tratados en el hopsital, llevar a cabo una investigación epidemiológica a través de una revisión retrospectiva de microbiológico, serológico, y datos post mortem para identificar los casos anteriores, y empezar una vigilancia prospectiva intensiva de casos adicionales de enfermedad de los legionarios nosocomial. Categoría IB

Si la evidencia de la continua transmisión nosocomial no está presente, continuar la vigilancia prospectiva intensiva (como se describe en II-B-3) durante al menos 2 meses después de que se inició la vigilancia de la fecha. CATEGORÍA II

Si la evidencia de la continua transmisión nosocomial está presente:

(1) Llevar a cabo una investigación para determinar el medio ambiente

(2) Si no se identifica una fuente, la vigilancia de

nuevos casos de al menos 2 meses, y, dependiendo del alcance del brote, ya sea decidir aplazar descontaminación espera de identificación de la fuente (s) de Legionella sp. o proceder a la descontaminación del sistema de distribución de agua del hospital, con especial atención a las áreas del hospital específicos implicados en el brote. CATEGORÍA II

y la investigación del medio ambiente, de inmediato se descontaminar (465). Categoría IB

(A) Si el sistema de agua caliente está implicado:

Dependiendo de las regulaciones locales y estatales con respecto a la temperatura del agua potable en edificios públicos (456), en pacientes hospitales de vivienda que están en alto riesgo de contraer legionelosis nosocomial (por ejemplo, pacientes inmunocomprometidos) o bien a) mantener el agua potable a la salida en mayor que o igual a 50 C o menos de 20 C o b) clorar el agua se calienta hasta alcanzar 1-2 mg / l de cloro libre residual en el grifo (385, 428,439,446-449) (Apéndice B). CATEGORÍA II

No hay recomendaciones para el tratamiento de agua con ozono, luz ultravioleta, o iones de metales pesados ​​(457,459,460,462). cuestión no resuelta

Limpiar los tanques de almacenamiento de agua caliente y calentadores de agua para eliminar acumulado escala y sedimentos (392). Categoría IB

(B) Si las torres de refrigeración o condensadores evaporativos están

implicados, descontaminar el sistema de la torre de enfriamiento (Apéndice D) (463). Categoría IB

(4) Evaluar la eficacia de las medidas aplicadas en la reducción

(A) Si Legionella sp. No se detectan en los cultivos durante

3 meses de seguimiento en intervalos de 2 semanas, recogen las culturas mensuales durante 3 meses. CATEGORÍA II

(B) Si Legionella sp. son detectadas en una o más

culturas, reevaluar las medidas de control aplicadas, modificarlas en consecuencia, y se repiten los procedimientos de descontaminación. Las opciones para la repetición de descontaminación incluyen ya sea el uso intensivo de la misma técnica utilizada para la descontaminación inicial o una combinación de sobrecalentamiento y hipercloración. CATEGORÍA II

(5) Mantener registros adecuados de todo el control de infecciones

medidas, incluidos los procedimientos de mantenimiento, y de los resultados de pruebas ambientales para torres de refrigeración y sistemas de agua potable-. CATEGORÍA II

PREVENCIÓN Y CONTROL DE NOSOCOMIALES PULMONAR ASPERGILOSIS

Educación y el personal de vigilancia de infecciones

Educar a los trabajadores sanitarios sobre la aspergilosis pulmonar nosocomial, especialmente con respecto a los pacientes inmunocomprometidos, y sobre los procedimientos de control de infecciones que se utilizan para reducir su incidencia (659-661). Categoría IA

Mantener un alto índice de sospecha para el diagnóstico de la aspergilosis pulmonar nosocomial en pacientes que están en alto riesgo de la enfermedad (es decir, pacientes que han prolongado, granulocitopenia severa , en particular los receptores de médula ósea-trasplante) (510,511,705). Los pacientes que han recibido trasplantes de órganos sólidos y pacientes con neoplasias hematológicas y están recibiendo quimioterapia también están en alto riesgo de contraer la infección si están gravemente granulocitopénica (472,485,510,706). Categoría IB

Interrupción de la transmisión de Aspergillus sp. Las esporas

La planificación de nuevas unidades de atención especializada para pacientes con alto riesgo de infección

Cuando la construcción de nuevas unidades de atención especializada para los pacientes con alto riesgo de infección, asegurar que los cuartos de los pacientes tienen la capacidad adecuada para reducir al mínimo la cantidad de esporas fúngicas a través de mantenimiento de a) la filtración HEPA, b) dirigida flujo de aire ambiente, c) la presión positiva de aire en las habitaciones de los pacientes en relación con la presión de aire en el pasillo, d) las cámaras selladas adecuadamente, y e) las altas tasas de cambios habitación con aire (473,528-530,533,537,707,708). Categoría IB

La filtración del aire. Instalar, ya sea en el centro o en el punto de uso (es decir, en el sitio de la ingesta de habitación con aire), los filtros de HEPA que son 99,97% de eficiencia en partículas de filtrado mayor que o igual a 0,3 um de diámetro (473,528-530,533,537,707,708). Categoría IB

flujo de aire dirigido habitación. Coloque aire de admisión y de escape puertos tales que el aire ambiental entra desde un lado de la habitación, fluye a través de la cama del paciente, y las salidas en el lado opuesto de la habitación (529.530). Categoría IB

habitación bien selladas. Construir ventanas, puertas, y los puertos de admisión y escape para lograr un sellado completo de la habitación contra las fugas de aire (529530). Categoría IB

(1) Para mantener la presión de la habitación con aire positiva en relación con el

corredor, el suministro de aire a la sala a una tasa que es 10% -20% mayor que la velocidad de aire que sale de la sala (529.530). Categoría IB

(2) Para la colocación de los pacientes que están en alto riesgo de

cambios de habitaciones con aire acondicionado. Ventile la habitación para garantizar mayor que o igual a 12 cambios de habitación con aire por hora se mantienen (1,529,535,536). CATEGORÍA II

Sin Recomendación para la instalación de un sistema preferencial en particular, tal como uno con las tasas de cambio de ultra-alta de aire (es decir, 100-400 cambios de aire por hora) (por ejemplo, el flujo de aire laminar), con respecto a otros sistemas que cumplen con las condiciones en las Secciones II-A- 1-a través de II-a-1-e (473,528-530,533,537,707,708). cuestión no resuelta

Formular las políticas del hospital para minimizar la exposición de los pacientes de alto riesgo a las fuentes potenciales de Aspergillus sp. (Por ejemplo, la construcción de hospitales y renovación, actividades, alfombras, alimentos, plantas en macetas, y arreglos florales de limpieza) (466 517 522 527, 709-711). Categoría IB

No hay recomendaciones para el uso profiláctico de biocida del cobre-8-quinolinolato en material ignífugo (466,477,530,537). cuestión no resuelta

En las instalaciones existentes con ningún caso de aspergilosis nosocomial

Coloque los pacientes que están en alto riesgo de infección en un ambiente protegido que cumpla con las condiciones que se describen en las secciones II-A-1-a través de II-A-1-e (473,517,528,537,707,708,712). Categoría IB

Inspeccionar los sistemas de tratamiento de aire en las áreas del hospital en el que se alojan los pacientes con alto riesgo de infección, mantener una adecuada bolsas de aire y los diferenciales de presión, y eliminar las fugas de aire. Coordinar las reparaciones del sistema con el traslado de los pacientes que están en alto riesgo de infección a otras áreas del hospital que tienen capacidades de tratamiento de aire óptimas (466,478, 517). Categoría IB

Reducir al mínimo la cantidad de tiempo que los pacientes que están en alto riesgo de infección se encuentran fuera de sus habitaciones para los procedimientos de diagnóstico y otras actividades; cuando tales pacientes salen de sus habitaciones, les obligan a llevar máscaras queden bien y capaz de filtrar Aspergillus sp. esporas. Categoría IB

Sistemática de examinar y coordinar las estrategias de control de la infección por el personal a cargo de la ingeniería hospitalaria, mantenimiento, red de abastecimiento y distribución, y la restauración (466.522). Categoría IB

Al planificar la construcción de hospitales y de las actividades de renovación, evaluar si los pacientes con alto riesgo de aspergilosis son susceptibles de ser expuestos a la cantidad de esporas de alta el aire ambiente de Aspergillus sp. de la construcción y renovación de los sitios, y si es así, desarrollar un plan para evitar que dichas exposiciones (466.522). Categoría IB

Durante las actividades de construcción o renovación:

Construir barreras entre el cuidado del paciente y de las áreas de construcción para evitar que entre polvo en las unidades de hospitalización; estas barreras (por ejemplo, de plástico o de yeso) deben ser impermeables a los géneros Aspergillus sp. (67478521522). Categoría IB

En las zonas de construcción y / o renovación dentro del hospital, crear y mantener negativa la presión del aire en relación a la de las unidades de hospitalización adyacentes a menos que tal diferencial de presión está contraindicado (por ejemplo, si los pacientes en las áreas de atención de pacientes adyacentes tienen tuberculosis infecciosa) (466,478,521,522, 537 ). CATEGORÍA II

tráfico peatonal directo desde las áreas de construcción fuera de las unidades de hospitalización para limitar la apertura y cierre de puertas u otras barreras que podrían causar la dispersión del polvo, la entrada de aire contaminado, o el seguimiento de polvo en las unidades de hospitalización (466,478,521,522). Categoría IB

Limpiar las zonas de nueva construcción antes de permitir que los pacientes entren en las áreas (466,522). Categoría IB

Eliminar la exposición de los pacientes en alto riesgo de aspergilosis a las actividades que puedan causar las esporas de Aspergillus sp. y otros hongos a ser envasada en aerosol (por ejemplo, suelo o pasar la aspiradora alfombra) (466, 517,522). Categoría IB

Eliminar la exposición de los pacientes en alto riesgo de aspergilosis a posibles fuentes ambientales de Aspergillus sp. (Alimentos contaminados-Aspergillus, por ejemplo, plantas en macetas, o arreglos florales) (466,517,522,709-711). CATEGORÍA II

Evitar que las aves tengan acceso a los hospitales conductos de entrada de aire (523). Categoría IB

Los siguientes procedimientos se deben seguir si se produce un caso de aspergilosis nosocomial:

Comenzar una búsqueda prospectiva de casos adicionales en los pacientes hospitalizados y una revisión retrospectiva de los intensificado microbiológica del hospital, histopatológico, y los registros postmortem. Categoría IB

Si hay evidencia de transmisión continua no está presente, seguirá los procedimientos de mantenimiento de rutina para prevenir la aspergilosis nosocomial (véanse las secciones II-B-1 a B-II-10). Categoría IB

Si la evidencia de continuar Aspergillus sp. infección está presente, realizar una investigación ambiental para determinar y eliminar la fuente. Si se necesita ayuda, póngase en contacto con el departamento de salud local o estatal (473,477,478,521,533,537). Categoría IB

Dependiendo de la disponibilidad de pruebas, realice subtipos moleculares de Aspergillus sp. obtenida de los pacientes y el medio ambiente para establecer la identidad de tensión (525.526). Categoría IB

Si los sistemas de tratamiento de aire que suministran aire a las zonas en que se alojan los pacientes de alto riesgo no son óptimos, tenga en cuenta el despliegue temporal de filtros HEPA portátiles hasta habitaciones con sistemas de tratamiento de aire óptimos están disponibles para todos los pacientes con alto riesgo de aspergilosis invasiva. CATEGORÍA II

Si una fuente ambiental de la exposición a Aspergillus sp. es identificado, lleve a cabo las medidas correctivas, según sea necesario para eliminar la fuente del entorno de los pacientes en alto riesgo de infección. Categoría IB

Si una fuente ambiental de la exposición a Aspergillus sp. no se identifica, revisar las medidas de control de infecciones existentes, incluidos los aspectos de ingeniería, para identificar las áreas potenciales que pueden ser corregidos o mejorados. Categoría IB

Modificación del riesgo para la infección por Host

PREVENCIÓN Y CONTROL DE infección por VRS

Educación y el personal de vigilancia de infecciones

Educar al personal con respecto a la epidemiología, los modos de transmisión y los medios de prevención de la transmisión del VRS (226,659-661). Categoría IA

Interrupción de la transmisión del VRS

La prevención de persona a persona de transmisión

Las medidas primarias para el aislamiento de contactos

Lavado de manos. Independientemente de si se llevaron puestos guantes, lavarse las manos después del contacto con un paciente o después de tocar las secreciones respiratorias o fómites potencialmente contaminados con secreciones respiratorias (218,231,553,583-585,594). Categoría IA

(1) Use guantes durante la manipulación de los pacientes o respiratoria

secreciones de pacientes que han confirmado o se sospecha infección por VRS y durante la manipulación de objetos inanimados que puedan estar contaminados con las secreciones del paciente (226,553,583,584, 590,596). Categoría IA

(2) Cambiar los guantes a) entre en contacto con diferentes pacientes

y b) después de manipular secreciones respiratorias o fómites contaminados con las secreciones de un paciente antes del contacto con otro paciente (226,228). Lávese las manos después de quitarse los guantes. (Ver II-A-1-a.) Categoría IA

Dotación de personal. Restringir los trabajadores sanitarios que se encuentran en las fases agudas de una enfermedad del tracto respiratorio superior (es decir, aquellos que son estornudos y / o tos) de la prestación de atención a los niños y otros pacientes con alto riesgo de complicaciones de la infección por VRS (por ejemplo, los niños que tienen severas condiciones cardiopulmonares subyacentes, los niños que reciben quimioterapia para tumores malignos, los bebés prematuros y pacientes que tienen el sistema inmunitario lo contrario) (594, 596). Categoría IB

La limitación de los visitantes. No permita que las personas que tienen síntomas de infección respiratoria pediátrica para visitar no infectada, inmunosuprimidos o pacientes cardíacos (590). CATEGORÍA II

El control de los brotes de RSV

El uso de habitaciones privadas, de cohortes, y el paciente cribado. Para controlar la transmisión del VRS en curso en el hospital, admitir a niños pequeños que tienen síntomas de enfermedad respiratoria viral para habitaciones individuales, si es posible, o realizar pruebas de diagnóstico RSV-investigación sobre los niños pequeños en el momento del ingreso en el hospital y la cohorte de acuerdo a su RSV-infección estado (590592, 594596). CATEGORÍA II

Personal de cohortes. Durante un brote de RSV nosocomial, el personal de cohortes tanto como sea posible (es decir, restringir el personal que preste atención a los pacientes infectados de proporcionar atención a los pacientes no infectados, y viceversa) (590, 594,596). CATEGORÍA II

El aplazamiento de la admisión del paciente. Durante los brotes de RSV nosocomial, posponer la admisión electiva de los pacientes no infectados con alto riesgo de complicaciones derivadas de la infección por VRS. CATEGORÍA II

El uso de gafas protectoras-nariz. Sin Recomendación para el uso de gafas protectoras-nariz durante el contacto cercano con un paciente infectado con RSV (593.597). cuestión no resuelta

PREVENCIÓN Y control de la influenza

Educación y el personal de vigilancia de infecciones

Educar a los trabajadores sanitarios sobre la epidemiología, los modos de transmisión y los medios de prevención de la transmisión de la influenza (659-661,715,716). Categoría IA

Se encargará de las pruebas de laboratorio estén disponibles para los médicos, para su uso cuando sea clínicamente indicado, para confirmar rápidamente el diagnóstico de la gripe y otras enfermedades respiratorias virales agudas, especialmente entre noviembre y abril (620-625). Categoría IB

Modificación del riesgo para la infección por Host

Los pacientes. Ofrecer la vacuna a pacientes ambulatorios y hospitalizados en alto riesgo de complicaciones derivadas de la gripe, a partir de septiembre y continuando hasta que la actividad de la influenza ha comenzado a disminuir (628, 647,648,717-719). Los pacientes con alto riesgo de complicaciones derivadas de la gripe incluyen a las personas mayores o iguales a 65 años de edad; las personas que se encuentran en las unidades de atención a largo plazo; o personas que tienen enfermedades crónicas del sistema pulmonar o cardiovascular, la diabetes mellitus, disfunción renal, hemoglobinopatías o inmunosupresión; personas de 6 meses a 18 años de edad que están recibiendo terapia de aspirina a largo plazo (628); y las personas que tienen trastornos músculo-esqueléticos que impiden la respiración adecuada. Categoría IA

Personal. Vacunar a los trabajadores sanitarios antes de la temporada de gripe comienza cada año, de preferencia entre mediados de octubre y mediados de noviembre. Hasta la disminución de la actividad de la influenza, continuará la vacuna a disposición de personal de nuevo ingreso y para los que inicialmente se negó la vacunación. Si el suministro de vacunas es limitado, dar la máxima prioridad a la vacunación de los trabajadores sanitarios que atienden a pacientes con mayor riesgo de complicaciones graves de la infección por influenza (véase la Sección II-A-1) (628). Categoría IB

El uso de agentes antivirales. (Véase la Sección IV, el control de brotes de influenza.)

La interrupción de persona a persona Transmisión

Mantenga un paciente que ha sospechado o confirmado de influenza en una habitación privada o, a menos que sea médicamente contraindicado, en una habitación con otros pacientes que han confirmado la influenza. Categoría IB

En la medida de lo posible, mantener la presión de aire negativa en las habitaciones de pacientes en los que se sospecha o diagnóstico de la gripe, o colocar personas que tienen una enfermedad similar a la gripe juntos en un área de hospital que tiene una organización independiente del sistema de escape de aire de suministro y (613 614 616, 720) . CATEGORÍA II

Instituir el uso de máscaras entre las personas – excepto aquellos inmunes a la cepa del virus que infecta – que entran en la habitación de un paciente que tiene la gripe (613614720). Categoría IB

Tanto como sea posible durante los períodos de actividad de la influenza en la comunidad, servicio de salud de los empleados del hospital debe evaluar PS que tiene fiebre y síntomas de la infección del tracto respiratorio superior sugerente de la gripe para una posible retirada de funciones que implican el contacto directo con los pacientes. Utilice las directrices más estrictas para los trabajadores sanitarios que trabajan en ciertas áreas de cuidado del paciente (por ejemplo, unidades de cuidados intensivos, viveros y unidades con pacientes gravemente inmunosuprimidos) (649, 721). CATEGORÍA II

Restringir las visitas hospitalarias que tienen una enfermedad respiratoria febril. Categoría IB

Reducir o eliminar los ingresos médicos y quirúrgicos electivos según sea necesario. Categoría IB

Restringir la cirugía cardiovascular y pulmonar para casos de emergencia. Categoría IB

Controlar los brotes de influenza

La determinación de la cepa del brote

Al principio de la epidemia, obtener muestras de frotis nasofaríngeo-o-lavado nasal de pacientes que recientemente tuvieron inicio de los síntomas sugestivos de la influenza para el cultivo de virus de la gripe o la detección de antígeno. Categoría IB

La vacunación de los pacientes y el personal sanitario

Administrar la vacuna de la gripe actual para los pacientes no vacunados y los trabajadores sanitarios, especialmente si el brote se produce a principios de la temporada de influenza (609.628). Categoría IB

La administración de amantadina o rimantadina

Cuando se sospecha o se identificó un brote nosocomial de la gripe A:

Administrar amantadina o rimantadina para la profilaxis a los trabajadores sanitarios no vacunados que no tienen contraindicaciones médicas a estos fármacos y que se encuentran en la unidad de que se trate o que atienden a los pacientes en alto riesgo de infección (631). CATEGORÍA II

Descontinuar amantadina o rimantadina si las pruebas de laboratorio confirman o sugieren fuertemente que la influenza tipo A no es la causa del brote (632). Categoría IA

Para la medida de lo posible, no permita el contacto entre las personas con alto riesgo de complicaciones por la influenza y los pacientes o los trabajadores sanitarios que están tomando amantadina o rimantadina para el tratamiento de enfermedades respiratorias agudas; evitar el contacto durante y hasta 2 días después de la última suspender el tratamiento (633,642-646). Categoría IB

La interrupción de la transmisión de persona a persona de microorganismos. (Véase la Sección III, A-E).

referencias

CDC. Directrices para la prevención de la transmisión de la tuberculosis en los centros de salud, 1994. MMWR 1994; (. Sin RR-13) 43.

Horan TC, White JW, Jarvis WR, et al. vigilancia de la infección nosocomial, 1984. MMWR 1986; 35 (No se 1SS.): 17 ß-29SS.

Schaberg DR, Culver DH, Gaynes RP. Las principales tendencias de la etiología microbiana de la infección nosocomial. Am J Med 1991; 91 (Suppl 3B): 72S-5S.

Bartlett JG, O’Keefe P, Tally FP, Louie TJ, Gorbach SL. Bacteriología de la neumonía adquirida en el hospital. Arch Intern Med 1986; 146: 868-71.

Fagon JY, Chastre J, Domart Y, et al. La neumonía nosocomial en pacientes que reciben ventilación mecánica continua: análisis prospectivo de 52 episodios con el uso de un cepillo espécimen protegido y técnicas de cultivo cuantitativo. Am Rev Respir Dis 1989; 139: 877-84.

Torres A, Aznar R, Gatell JM, et al. De incidencia, riesgo y pronóstico de los factores de la neumonía nosocomial en pacientes ventilados mecánicamente. Am Rev Respir Dis 1990; 142: 523-8.

Chastre J, Fagon JY, Soler P, et al. El diagnóstico de la neumonía bacteriana nosocomial en pacientes intubados sometidos a ventilación: comparación de la utilidad de lavado broncoalveolar y el cepillo espécimen protegido. Am J Med 1988; 85: 499-506.

Fagon JY, Chastre J, Hance AJ, et al. La detección de la infección pulmonar nosocomial en pacientes ventilados: uso de un cepillo espécimen protegido y técnicas de cultivo cuantitativos en 147 pacientes. Am Rev Respir Dis 1988; 138: 110-6.

Chastre J, Viau F, Brun P, et al. Evaluación prospectiva de la brocha espécimen protegido para el diagnóstico de las infecciones pulmonares en pacientes ventilados. Am Rev Respir Dis 1984; 130: 924-9.

Jimenez P, Torres A, Rodríguez-Roisin R, et al. Incidencia y etiología de la neumonía adquirida durante la ventilación mecánica. Med Crit Care 1989; 17: 882-5.

Torres A, Puig de la Bellacasa J, Rodríguez-Roisin R, Jiménez de Anta MT, valor Agusti-Vidal A. Diagnóstico de telescópico conectado catéteres en pacientes ventilados mecánicamente con neumonía bacteriana utilizando el catéter Metras. Am Rev Respir Dis 1988; 138: 117-20.

Meduri GU, Beals DH, Maijub AG, Baselski V. lavado broncoalveolar Protegido: una nueva técnica broncoscópica para recuperar las secreciones de las vías respiratorias distales no contaminadas. Am Rev Respir Dis 1991; 143: 855-64.

Rodríguez de Castro M, Sole J Violan, Lafarga Capuz B, Caminero Luna J, González Rodríguez B, Manzano Alonso JL. La fiabilidad de la broncoscopia protegida cepillo de catéter en el diagnóstico de neumonía en pacientes con ventilación mecánica. Med Crit Care 1991; 19: 171-5.

Davidson M, Tempest B, Palmer DL. el diagnóstico bacteriológico de la neumonía aguda: comparación de esputo, aspirados transtraqueales, y aspirados pulmonares. JAMA 1976; 235: 158-63.

Fagon JY, Chastre J, Hance AJ, Montravers P, Novara A, C Gibert nosocomial neumonía en pacientes ventilados: un estudio de cohorte evaluar la mortalidad atribuible y la estancia hospitalaria. Am J Med 1993; 94: 281-8.

Higuchi JH, Coalson JJ, diagnóstico Johanson WG Jr. bacteriológico de la neumonía nosocomial en los primates: utilidad del cepillo espécimen protegido. Am Rev Respir Dis 1982; 125: 53-7.

Bryan CS, Reynolds KL. neumonía nosocomial bacteriémica: análisis de 172 episodios de una sola área metropolitana. Am Rev Respir Dis 1984; 129: 668-71.

Espersen M, Gabrielsen J. neumonía por Staphylococcus aureus durante la ventilación mecánica. J Infect Dis 1981; 144: 19-23.

Reusser P, W Zimmerli, Scheidegger D, Marbet GA, Buser H, Gyr K. El papel de la colonización gástrica en las infecciones nosocomiales y la endotoxemia: un estudio prospectivo en pacientes neuroquirúrgicos con ventilación mecánica. J Infect Dis 1989; 160: 414-21.

Johanson WG Jr, Pierce AK, Sanford JP, Thomas GD. infecciones respiratorias nosocomiales con bacilos gram-negativos: la importancia de la colonización del tracto respiratorio. Ann Intern Med 1972; 77: 701-6.

Berger R, el diagnóstico etiológico Arango L. bacteriana de la neumonía nosocomial en pacientes gravemente enfermos. Med Crit Care 1985; 13: 833-6.

Andrews CP, Coalson JJ, Smith JD, Johanson WG Jr. El diagnóstico de la neumonía bacteriana nosocomial en la lesión pulmonar aguda, difusa. Chest 1981; 80: 254-8.

Salata RA, Lederman MM, Schlaes DM, et al. El diagnóstico de la neumonía nosocomial en pacientes, unidad de cuidados intensivos INTU-acanalados. Am Rev Respir Dis 1987; 135: 426-32.

Pham LH, Brun-Buisson C, Legrand P, et al. El diagnóstico de la neumonía nosocomial en pacientes ventilados mecánicamente: comparación de un catéter telescópico conectado con el cepillo espécimen protegido. Am Rev Respir Dis 1991; 143: 1055-1061.

Meduri GU. Asociada a la ventilación neumonía en pacientes con insuficiencia respiratoria: una aproximación diagnóstica. Chest 1990; 97: 1208-19.

Campana RC, Coalson JJ, Smith JD, Johanson WG Jr. una falla orgánica múltiple y la infección en el síndrome de distrés respiratorio del adulto. Ann Intern Med 1983; 99: 293-8.

Tobin MJ, infección pulmonar Grenvik A. nosocomial y su diagnóstico. Med Crit Care 1984; 12: 191-9.

Villers D, Derriennic M, Raffi F, et al. La fiabilidad de la broncoscopia protegida cepillo catéter en pacientes intubados y ventilados. Chest 1985; 88: 527-30.

Guckian JC, Christensen WD. cultivo cuantitativo y tinción de Gram del esputo en la neumonía. Am Rev Respir Dis 1978; 118: 997-1005.

Lowry FD, Carlisle PS, Adams A, Feiner C. La incidencia de neumonía nosocomial después de la intubación endotraqueal urgente. Infect Control de 1987; 8: 245-8.

Craven DE, Kunches LM, Kilinsky V, Lichtenberg DA, Hacer BJ, McCabe WR. Los factores de riesgo para la neumonía y la mortalidad en los pacientes que reciben ventilación mecánica continua. Am Rev Respir Dis 1986; 133: 792-6.

Celis R, Torres A, JM Gatell, Almela M, Rodríguez-Roisin R, neumonía Agusti-Vidal A. nosocomial: un análisis multivariado de riesgo y pronóstico. Chest 1988; 93: 318-24.

Garner JS, Jarvis WR, Emori TG, TC Horan, Hughes JM. las definiciones de infección del CDC, 1988. Am J Infect Control de 1988; 16: 128-40.

Fagon JY, Chastre J, Hance AJ, Domart Y, Trouillet JL, Gibert C. La evaluación de juicio clínico en la identificación y tratamiento de la neumonía nosocomial en pacientes ventilados. Chest 1993; 103: 547-53.

Baughman RP, Thorpe JE, Staneck J, M Rashkin, PT marco. El uso del cepillo espécimen protegido en pacientes con endotraqueal o de traqueotomía tubos. Chest 1987; 91: 233-6.

Meduri GU, Wunderink RG, Leeper KV, Beals DH. Tratamiento de la neumonía bacteriana en pacientes ventilados: protegida lavado broncoalveolar como herramienta de diagnóstico. Chest 1992; 101: 500-8.

Bryant LR, Trinkle JK, Mobin-Uddin K, Baker J, Griffin WO Jr. perfil La colonización bacteriana con intubación traqueal y ventilación mecánica. Arco Surg 1972; 104: 647-51.

Torres A, Puig de la Bellacasa J, Xaubet A, et al. Valor diagnóstico de los cultivos cuantitativos de lavado broncoalveolar y telescópico conectado catéteres en pacientes ventilados mecánicamente con neumonía bacteriana. Am Rev Respir Dis 1989; 140: 306-10.

RS Lambert, Vereen LE, George RB. La comparación de los aspirados traqueales y las muestras de catéter telescopado para la identificación de bacterias patógenas en pacientes con ventilación mecánica. Am J Med Sci 1989; 297: 377-82.

Meduri GU, Chastre J. La estandarización de las técnicas de broncoscopia para la neumonía asociada al ventilador. Chest 1992; 102 (Supl 1): 557S-64S.

Baselski VS, el-Torky M, Coalson JJ, Griffin JP. La estandarización de los criterios para el procesamiento e interpretación de las muestras de laboratorio en pacientes con sospecha de neumonía asociada al ventilador. Chest 1992; 102: 571S-9S.

Wunderink RG, Mayhall CG, Gibert C. Metodología para la investigación clínica de la neumonía asociada al ventilador: epidemiología y la intervención terapéutica. Chest 1992; 102 (Supl 1): 580S-8S.

Martos JA, Ferrer M, Torres A, et al. La especificidad de los cultivos cuantitativos de cepillo protegido espécimen y el lavado broncoalveolar de pacientes con ventilación mecánica . Am Rev Respir Dis 1990; 141: A276.

Marquette CH, Ramón P, Courcol R, Wallaert B, Tonnel AB, Voisin C. broncoscópica protegidos cepillo catéter para el diagnóstico de las infecciones pulmonares. Chest 1988; 93: 746-50.

Thorpe JE, Baughman RP, PT marco, Wesseler TA, Staneck JL. El lavado broncoalveolar para el diagnóstico de la neumonía bacteriana aguda. J Infect Dis 1987; 155: 855-61.

Johanson WG Jr, Seidenfeld JJ, Gómez P, de los Santos R, Coalson JJ. el diagnóstico bacteriológico de la neumonía nosocomial después de la ventilación mecánica prolongada. Am Rev Respir Dis 1988; 137: 259-64.

Guerra LF, Baughman RP. El uso del lavado broncoalveolar para el diagnóstico de la neumonía bacteriana en pacientes con ventilación mecánica. Med Crit Care 1990; 18: 169-73.

Chastre J, Fagon JY, Soler P, et al. La cuantificación de células BAL que contienen bacterias intracelulares identifica rápidamente a los pacientes ventilados con neumonía nosocomial. Chest 1989; 95: 190S-2S.

Rouby JJ, Rossignon MD, Nicolas MH, et al. Un estudio prospectivo de lavado broncoalveolar protegida en el diagnóstico de la neumonía nosocomial. Anesthesiology 1989; 71: 679-85.

Trouillet JL, Guiguet M, Gibert C, et al. La fibrobroncoscopia en pacientes ventilados: evaluación del riesgo cardiopulmonar bajo sedación con midazolam. Chest 1990; 97: 927-33.

Lindholm CE, Ollman B, JV Snyder, Millen por ejemplo, efectos Grenvik A. cardiorrespiratorios de la broncoscopia flexible de fibra óptica en pacientes críticamente enfermos. Chest 1978; 74: 362-8.

Rouby JJ, Martín de Lasalle E, Poete P, et al. bronconeumonía nosocomial en los críticamente enfermos: histológicos y bacteriológicos aspectos. Am Rev Respir Dis 1992; 146: 1059-1066.

Piperno D, Gaussorgues P, P Bachmann, Jaboulay JM, Robert D. valor diagnóstico del lavado broncoalveolar nonbronchoscopic durante la ventilación mecánica . Chest 1988; 93: 223.

el-Ebiary M, Torres A, González J, et al. Los cultivos cuantitativos de aspirado endotraqueal para el diagnóstico de la neumonía asociada al ventilador. Am Rev Respir Dis 1993; 148: 1552-7.

Marquette CH, Georges H, Cartera F, et al. La eficiencia diagnóstica de los aspirados endotraqueales con cultivos bacterianos cuantitativos en pacientes intubados con sospecha de neumonía: comparación con el cepillo espécimen protegido. Am Rev Respir Dis 1993; 148: 138-44.

Emori TG, Gaynes RP. Una visión general de las infecciones nosocomiales, incluyendo el papel del laboratorio de microbiología. Clin Microbiol Rev 1993; 6: 428-42.

Garibaldi RA, Britt MR, ML Coleman, Reading JC, Pace NL. Los factores de riesgo para la neumonía postoperatoria. Am J Med 1981; 70: 677-80.

Emori TG, Banerjee SN, Culver DH, et al. Las infecciones nosocomiales en pacientes de edad avanzada en los Estados Unidos, 1986-1990: Sistema Nacional de Vigilancia de Infecciones Nosocomiales. Am J Med 1991; 91 (Suppl 3B): 289S-93S.

Cruz AS, Roup B. El papel de los dispositivos de asistencia respiratoria en la neumonía nosocomial endémica. Am J Med 1981; 70: 681-5.

Jarvis WR, Edwards JR, Culver DH, et al. las tasas de infección nosocomial en unidades de cuidados intensivos pediátricos en los Estados Unidos y adultos: Sistema Nacional de Vigilancia de Infecciones Nosocomiales. Am J Med 1991; 91 (Suppl 3B): 185S-91S.

Rello J, Quintana E, Ausina V, C Puzo, Net A, Prats G. Los factores de riesgo para el Staphylococcus aureus neumonía nosocomial en pacientes críticamente enfermos. Am Rev Respir Dis 1990; 142: 1320-4.

Gaynes R, Bizek B, Mowry-J Hanley, Kirsch M. Factores de riesgo de neumonía nosocomial después de las operaciones de bypass coronario. Ann Thorac Surg 1991; 51: 215-8.

Joshi N, Localio AR, Hamory BH. Un índice de riesgo predictivo para la neumonía nosocomial en la unidad de cuidados intensivos. Am J Med 1992; 93: 135-42.

Jacobs S, Chang RW, Lee B, Bartlett FW. alimentación enteral continua: una causa importante de neumonía en los pacientes de la unidad de cuidados intensivos ventilados. J Nutr Padres Introduzca 1990; 14: 353-6.

Ashbaugh DC, Petty TL. Sepsis complicando el síndrome de dificultad respiratoria aguda. Surg Gynecol Obstet 1972; 135: 865-9.

Chevret S, M Hemmer, Carlet J, M. Langer Incidencia y factores de riesgo de la neumonía adquirida en unidades de cuidados intensivos: resultados de un estudio prospectivo sobre 996 pacientes muticenter – Grupo Europeo de Cooperación sobre la neumonía nosocomial. Intensive Care Med 1993; 19: 256-64.

Hanson LC, Weber DJ, Rutala WA. Los factores de riesgo para la neumonía nosocomial en los ancianos. Am J Med 1992; 92: 161-6.

Kollef MH. La neumonía asociada a la ventilación mecánica: un análisis multivariado. JAMA 1993; 270: 1965-1970.

Craven DE, Kunches LM, Lichtenberg DA, Köllisch NR, Barry MA, Heeren TC. La infección nosocomial y mortalidad en pacientes de cuidados intensivos médicos y quirúrgicos. Arch Intern Med 1988; 148: 1161-8.

Graybill JR, Marshall LW, Charache P, Wallace CK, Melvin VB. La neumonía nosocomial: un importante problema continuo. Am Rev Respir Dis 1973; 108: 1130-1140.

Bruto PA, infecciones nosocomiales Van Antwerpen C. y muertes hospitalarias. Am J Med 1983; 75: 658-62.

Stevens RM, Teres D, Skillman JJ, Feingold DS. Neumonía en una unidad de cuidados intensivos: una experiencia de 30 meses. Arch Intern Med 1974; 134: 106-11.

Craig CP, Connelly S. Efecto de la unidad de cuidados intensivos neumonía nosocomial en la duración de la estancia y la mortalidad. Am J Infect Control de 1984; 12: 233-8.

Leu SA, Kaiser DL, Mori M, Woolson RF, Wenzel RP. Adquirida en el hospital neumonía: la mortalidad y la morbilidad atribuibles. Am J Epidemiol 1989; 129: 1258-1267.

Haley RW, Schaberg DR, Crossley KB, Von Allmen SD, McGowan JE Jr. cargos adicionales y la prolongación de la estancia atribuible a las infecciones nosocomiales: una comparación entre hospitales prospectivo. Am J Med 1981; 70: 51-8.

Freeman J, Rosner BA, McGowan JE Jr. Los efectos adversos de la infección nosocomial. J Infect Dis 1979; 140: 732-40.

Martone WJ, Jarvis WR, Culver DH, Haley RW. La incidencia y la naturaleza de las infecciones nosocomiales endémicas y epidémicas. En: Bennett JV, Brachman PS, eds. Las infecciones hospitalarias. 3ª ed. Boston: Little, Brown and Co., 1993: 577-96.

Huxley EJ, Viroslav J, Gray WR, Pierce AK. la aspiración faríngea en adultos normales y pacientes con depresión de la conciencia. Am J Med 1973; 64: 564-8.

Olivares L, Segovia A, Revuelta R. La alimentación por sonda y la aspiración letal en pacientes neurológicos: una revisión de 720 casos de autopsia. Stroke 1974; 5: 654-7.

Pulverizar SB, Zuidema GD, Cameron JL. La neumonía por aspiración: incidencia de aspiración con tubos endotraqueales. Am J Surg 1976; 131: 701-3.

Cameron JL, J Reynolds, Zuidema GD. La aspiración en pacientes con traqueostomía. Surg Gynecol Obstet 1973; 136: 68-70.

Johanson WG, Pierce AK, Sanford JP. Cambio de la flora bacteriana faríngeas de pacientes hospitalizados: aparición de bacilos gram-negativos. N Engl J Med 1969; 281: 1137-1140.

Niederman MS, Merrill WW, Ferranti RD, Pagano KM, Palmer LB, Reynolds HY. el estado nutricional y la unión bacteriana en el tracto respiratorio inferior en pacientes con traqueotomía crónica. Ann Intern Med 1984; 100: 795-800.

Reynolds HY. La adherencia bacteriana a la mucosa de las vías respiratorias: una interacción dinámica que conduce a la colonización. Semin Respir Infect 1987; 2: 8-19.

Louria DB, Kanimski T. Los efectos de cuatro regímenes de medicamentos antimicrobianos en la superinfección de esputo en pacientes hospitalizados. Am Rev Respir Dis 1962; 85: 649-65.

Rosenthal S, Tager IB. La prevalencia de bacilos gram-negativos en la flora faríngea normales. Ann Intern Med 1975; 83: 355-7.

Valenti WM, Trudell RG, Bentley DW. Los factores que predisponen a la colonización orofaríngea con bacilos gram-negativos en las personas de edad. N Engl J Med 1978; 298: 1108-1111.

Woods, DE, Straus DC, Johanson WG Jr, Berry VK, Bajo JA. Papel de pili en la adherencia de Pseudomonas aeruginosa a las células epiteliales bucales mamíferos. Infect Immun 1980; 29: 1146-51.

Niederman MS. La adherencia bacteriana como un mecanismo de colonización de las vías respiratorias. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 1989; 8: 15-20.

Johanson WG Jr, Higuchi JH, Chaudhuri TR, maderas DE. La adherencia bacteriana a las células epiteliales en la colonización bacilar de las vías respiratorias. Am Rev Respir Dis 1980; 121: 55-63.

Abraham SN, Beachey EH, Simpson WA, et al. La adherencia de Streptococcus pyogenes, Escherichia coli y Pseudomonas aeruginosa a recubiertas de fibronectina y las células epiteliales no recubiertos. Infect Immun 1983; 41: 1261-8.

Beachey EH. La adherencia bacteriana: la interacción adhesina de los receptores que median la unión de las bacterias a las superficies mucosas. J Infect Dis 1981; 143: 325-45.

Woods, DE, Straus DC, Johanson WG Jr, Bajo JA. Papel de la fibronectina en la prevención de la adherencia de Pseudomonas aeruginosa a las células bucales. J Infect Dis 1981; 143: 784-90.

Woods, DE, Straus DC, Johanson WG Jr, Bajo JA. Papel de la actividad de la proteasa salival en la adherencia de los bacilos gram-negativa a las células epiteliales bucales de mamífero in vivo. J Clin Invest 1981; 68: 1435-40.

Niederman MS, Merrill WW, Polomski LM, Reynolds HY, Gee JB. Influencia de esputo IgA y elastasa en la adherencia bacteriana de células traqueal. Am Rev Respir Dis 1986; 133: 255-60.

Niederman MS, Rafferty TD, Sasaki CT, Merrill WW, Matthay RA, Reynolds HY. La comparación de la adhesión bacteriana a células epiteliales ciliadas y de células escamosas obtenidos a partir del tracto respiratorio humano. Am Rev Respir Dis 1983; 127: 85-90.

Palmer LB, Merrill WW, Niederman MS, RD Ferranti, Reynolds HY. La adherencia bacteriana a las células de las vías respiratorias: las relaciones entre in vivo e in vitro pH y la unión bacteriana. Am Rev Respir Dis 1986; 133: 784-8.

Dal Nogare AR, Toews GB, Pierce AK. El aumento de la elastasa salival precede a la colonización por gramnegativos bacilar en pacientes postoperatorios. Am Rev Respir Dis 1987; 135: 671-5.

Proctor RA. Fibronectina: una breve descripción de su estructura, la función y la fisiología. Rev Infect Dis 1987; 9: S317-21.

Atherton ST, White DJ. De estómago como fuente de bacterias que colonizan el tracto respiratorio durante la respiración artificial. Lancet 1978; 2: 968-9.

du Moulin GC, Paterson DG, Hedley-Whyte J, Lisboa A. La aspiración de bacterias gástricas en pacientes tratados con antiácidos-: una causa frecuente de la colonización de la vía aérea postoperatoria. Lancet 1982; 2: 242-5.

Kappstein I, Schulgen G, Friedrich T, et al. La incidencia de neumonía en pacientes con ventilación mecánica tratados con sucralfato o cimetidina como profilaxis para la hemorragia estrés: la colonización bacteriana del estómago. Am J Med 1991; 91 (Suppl 2 A): 125S-31S.

Torres A, el-Ebiary M, González J, et al. Gástricos y faríngea flora de la neumonía nosocomial adquiridos durante la ventilación mecánica. Am Rev Respir Dis 1993; 148: 352-7.

Martin LF, Booth FV, Karlstadt RG, et al. cimetidina intravenosa continua disminuye la hemorragia gastrointestinal superior relacionada con el estrés sin promover la neumonía. Med Crit Care 1993; 21: 19-30.

Pingleton SK, Hinthorn DR, nutrición enteral C. Liu en los pacientes que reciben ventilación mecánica: múltiples fuentes de colonización traqueal incluyen el estómago. Am J Med 1986; 80: 827-32.

Driks MR, Craven DE, Celli BR, et al. La neumonía nosocomial en pacientes intubados dado sucralfato en comparación con antiácidos o histamina tipo 2 bloqueadores: el papel de la colonización gástrica. N Engl J Med 1987; 317: 1376-1382.

Drasar BS, Shiner M, McLeod GM. Los estudios sobre la flora intestinal. I. La flora bacteriana del tracto gastrointestinal en personas sanas y aclorhídricos. Gastroenterología 1969; 56: 71-9.

Garrod LP. Un estudio de la potencia bactericida de ácido clorhídrico y del jugo gástrico. St Barth Hosp Rep 1939; 72: 145-67.

Arnold I. La flora bacteriana dentro del estómago y el intestino delgado: el efecto de las alteraciones experimentales de equilibrio ácido-base y la edad del sujeto. Am J Med Sci 1933; 186: 471-81.

Ruddell WS, Axon AT, Findlay JM, Bartolomé BA, Colina MJ. Efecto de la cimetidina en la flora bacteriana gástricos. Lancet 1980; 1: 672-4.

Donowitz LG, Página MC, Mileur BL, Guenthner SH. Alteración de la flora gástrica normal en los pacientes críticos que reciben tratamiento con antiácidos y cimetidina. Infect Control de 1986; 7: 23-6.

Priebe HJ, Skillman JJ, Bushnell LS, Long PC, Silen W. Antiácido frente cimetidina en la prevención de la hemorragia gastrointestinal aguda. N Engl J Med 1992; 302: 426-30.

Zinner MJ, Zuidema GD, Smith PL, Mignosa M. La prevención de la hemorragia del tracto gastrointestinal superior en pacientes en una unidad de cuidados intensivos. Surg Gynecol Obstet 1981; 153: 214-20.

Schulze T, Edmondson EB, Pierce AK, Sanford JP. Estudios de un nuevo dispositivo de humidificación como una fuente potencial de los aerosoles de bacterias. Am Rev Respir Dis 1967; 96: 517-9.

Pierce AK, Sanford JP. La contaminación bacteriana de los aerosoles. Arch Intern Med 1973; 131: 156-9.

JD cerebro, Valberg PA. La deposición de aerosol en el tracto respiratorio. Am Rev Respir Dis 1979; 120: 1325-1373.

Rhame FS, Streifel A, C McComb, humidificadores Boyle M. burbujean producen microaerosols que pueden transportar bacterias. Infect Control de 1986; 7: 403-7.

Deitch EA, Berg R. bacteriana translocación del intestino: un mecanismo de la infección. J Burn Care Rehab 1987; 8: 475-82.

Fiddian-verde RG, Baker S. nosocomial neumonía en el estado crítico: producto de la aspiración o la translocación? Med Crit Care 1991; 19: 763-9.

Harkness GA, Bentley DW, Roghmann KJ. Los factores de riesgo para la neumonía nosocomial en los ancianos. Am J Med 1990; 89: 457-63.

Windsor JA, Colina GL. Los factores de riesgo para la neumonía postoperatoria: la importancia de depleción proteica. Ann Surg 1988; 208: 209-14.

Penn RG, Sanders WE, Sanders CC. La colonización de la orofaringe con bacilos gram-negativos: un importante antecedente de la neumonía nosocomial. Control de Am J Infect 1981; 9: 25-34.

Lepper MH, Kofman S, Blatt N, et al. Efecto de ocho antibióticos usar por separado y en combinación sobre la flora traqueales siguientes traqueotomía en la poliomielitis. Antibiot Chemother 1954; 4: 829-33.

Klick JM, du Moulin GC, Hedley-Whyte J, D Teres, Bushnell LS, Feingold DS. Prevención de la neumonía por bacilos gramnegativos usando aerosol polimixina como profilaxis. II. Efecto sobre la incidencia de neumonía en pacientes gravemente enfermos. J Clin Invest 1975; 55: 514-9.

Feeley TW, du Moulin GC, Hedley-Whyte J, Bushnell LS, Gilbert JP, Feingold DS. polimixina aerosol y neumonía en pacientes gravemente enfermos. N Engl J Med 1975; 293: 471-5.

Las citas bibliográficas, referencias 141-733 pueden obtenerse a partir de los CDC Centro Nacional de Enfermedades Infecciosas, Programa de Infecciones del Hospital, Mailstop E-69, 1600 Clifton Road, N. E. Atlanta, GA 30333; Teléfono: (404) 639-6413; Fax: (404) 639-6459; página principal de Internet: http://www.cdc.gov/ncidod/hip/hip.htm.

APÉNDICE A Ejemplos de productos que semicrítico * Usado en el tracto respiratorio

mascarilla o tubo traqueal,

Inspiratorio y espiratorio tubo,

Los elementos que directa o indirectamente en contacto con las membranas mucosas de las vías respiratorias; éstos deben ser esterilizados o sometidos a desinfección de alto nivel antes de su reutilización.

Procedimientos B Mantenimiento Apéndice usa para disminuir la supervivencia y multiplicación de Legionella sp. en sistemas de distribución de agua potable,

El suministro de agua en mayor que o igual a 50 C en todos los puntos en el sistema de agua caliente, incluyendo los grifos.

Esto requiere que el agua de los acumuladores (calentadores de agua) se mantendrá en mayor que o igual a 60 C. En el Reino Unido, donde el mantenimiento de la temperatura del agua en mayor que o igual a 50 ° C en los hospitales ha recibido el mandato, la instalación de la combinación o la mezcla válvulas en o cerca de grifos para reducir la temperatura del agua es inferior o igual a 43 ° C ha sido recomendado en ciertos ajustes para reducir el riesgo de sufrir lesiones por quemadura de los pacientes, visitantes y trabajadores sanitarios (446). Sin embargo, Legionella sp. puede multiplicar incluso en segmentos cortos de tubo que contiene el agua a esta temperatura. El aumento de la velocidad de flujo del sistema de circulación de agua caliente puede ayudar a disminuir la probabilidad de estancamiento de agua y la refrigeración (449 723). Aislamiento de las tuberías para asegurar el suministro de agua fría (menos de 20 C) para los calentadores de agua (como a los puntos de agua fría) puede disminuir la oportunidad para la multiplicación bacteriana (391). Ambos "piernas muertas" y "espuelas tapados" * En el sistema de tuberías proporcionar áreas de estancamiento y enfriamiento a menos de 50 C, independientemente de la temperatura del agua que circula; estos segmentos pueden tener que ser eliminado para evitar la colonización (724). juntas de goma dentro de los sistemas de plomería se han asociado con la persistencia de la colonización, y la sustitución de estos accesorios pueden ser necesarios para Legionella sp. la erradicación (725).

II. cloración continua para mantener las concentraciones de residual libre

cloro a 1-2 mg / L en el grifo

Una pierna muerta es una pipa, o espuela, que va desde el sistema de recirculación de agua a una toma de corriente que se utiliza con poca frecuencia (es decir, el calor o el cloro en el sistema de recirculación no puede fluir adecuadamente a la salida). Un estímulo capsulado es un tubo que conduce desde el sistema de recirculación de agua a una salida que ha sido cerrado (es decir, el espolón ha sido "tapado"). Un espolón cubiertas no se puede lavar, y puede que no se notó menos que se elimine la pared circundante.

Apéndice C cultivo de muestras ambientales para Legionella sp.

Procedimiento recomendado para la recolección y procesamiento de muestras ambientales de Legionella sp. (728)

Recoger el agua (si es posible, las muestras 1-L) en frascos estériles, con tapa de rosca, que contiene preferentemente de tiosulfato de sodio a una concentración de 0,5 cc de solución 0,1 N de agua de la muestra. (Tiosulfato de sodio inactiva cualquier biocida halógeno residual.)

Recoger cultura-hisopos de las superficies internas de los grifos, aireadores, y cabezal de ducha; en un recipiente, con tapa de rosca estéril, tal como un tubo de plástico de centrífuga de 50 cc, se sumergen cada hisopo en 5 a 10 cc de agua de la muestra tomada del mismo dispositivo desde el que se obtuvo la muestra.

Tan pronto como sea posible después de la recogida de muestras de agua, y los hisopos deben ser transportados y procesados ​​en un laboratorio competente en el cultivo de muestras de agua de Legionella sp. Las muestras pueden ser transportados a temperatura ambiente pero deben ser protegidos de temperaturas extremas.

Posible, las muestras y los sitios de muestreo de Legionella sp. en el hospital (733)

sistema de agua potable

principal de agua de entrada

Los tanques del calentador de agua (en los lugares de entrada y salida)

tomas de agua potable (por ejemplo, grifos o grifos, duchas), especialmente los puntos de venta situados en o cerca de los cuartos de los pacientes-caso

torre de refrigeración / condensador evaporativo

Cuenca (es decir, bajo el área de torre para la recogida de agua enfriada)

Sumidero (es decir, la sección de la cuenca de la que enfría el agua regresa a la fuente de calor)

La fuente de calor (por ejemplo, enfriadores)

Humidificadores (es decir, nebulizadores)

Bubblers de oxígeno

Las zonas con acumulación de biopelícula visible

Antes de la desinfección química y limpieza mecánica

Cierre el enfriamiento de la torre.

Si es posible, apague la fuente de calor.

Apagar ventiladores, si está presente, en la torre de refrigeración del condensador / evaporador (CT / CE).

Apagar el sistema de purga (purga es decir) de la válvula. Cierre el controlador de purga automática, si está presente, y establecer el controlador del sistema a manual.

Mantener las válvulas de agua de relleno abierta.

Cerrar los difusores de la construcción de toma de aire dentro de al menos 30 m de la CT / CE hasta después de que el procedimiento de limpieza se ha completado.

Continuar el accionamiento de bombas de circulación de agua a través de la CT / CE.

Registrar el tipo y la calidad de todos los productos químicos utilizados para la desinfección, el tiempo exacto se añadieron los productos químicos para el sistema, y ​​el tiempo y los resultados de las mediciones de FRC y de pH.

Dos horas después de la adición de desinfectante y dispersante o después de la FRC nivel es estable a mayor que o igual a 10 mg / L, monitor a intervalos de 2 horas y mantener el FRC en mayor que o igual a 10 mg / L durante 24 horas.

Vuelva a llenar el sistema con agua y repita el procedimiento descrito en los pasos 2-6 en la sección I-B anterior.

Después de agua del segundo desinfección química ha sido drenada, apagar el CT / CE.

Inspeccionar todas las áreas de contacto con el agua para los sedimentos, lodos, y la escala. El uso de cepillos y / o una manguera de agua a baja presión, limpiar a fondo todas las áreas de contacto con el agua CT / CE, incluida la cuenca, sumidero, boquillas de pulverización, llenar, y accesorios. Sustituir los componentes según sea necesario.

Si es posible, las zonas de contacto con el agua limpia CT / CE dentro de las cámaras de refrigeración.

Después de la limpieza mecánica

Llenar el sistema con agua y añadir cloro para lograr el nivel de FRC de 10 mg / L.

Hacer circular el agua durante 1 hora, a continuación, abra la válvula de purga y vaciar todo el sistema hasta que el agua está libre de turbidez.

Drenar el sistema.

Abrir las rejillas de entrada de aire que se cerraron antes de la limpieza.

Llenar el sistema con agua. CT / CE se puede volver a poner en servicio utilizando un programa de tratamiento de agua eficaz.

Tabla 2
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Tabla 3
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